方便快捷的LSMTM淋巴细胞分离液：早期分离白细胞的方法，会用一种化合物混合血液。此化合物能够聚集红细胞，只轻微影响白细胞。通过离心，红细胞由于密度增加而聚集沉淀，同时从离心管内上层收集白细胞。后来，Böyum提出的以Ficoll®-甲泛影钠溶液为介质进行离心。稀释的血液在Ficoll®-甲泛影钠溶液中分层，之后低速短时离心。红细胞和多形核粒细胞沉降到管底，单个淋巴细胞、单核细胞和血小板可以从两个分层间的分界面处收集。而MP Biomedicals出品的淋巴细胞分离液，不同于Böyum的配方，由于LSM中含有聚蔗糖和泛影酸盐，能够形成特定的密度梯度1.077 g/mL（20℃）。只需要将血液样品轻置于淋巴细胞分离液上层，经过简单的一步离心(400 xg，30分钟)，就能够分离获得淋巴细胞。PBS：PBS粉剂每袋加ddH2O定容至1000mL，调pH7.2，高压灭菌，4℃保存备用。5´-核苷酸酶(5´-NT)检测试剂盒(钼蓝比色法)
稳定转染细胞的筛选：1、转染48 h后，用含适当浓度的潮霉素B筛选培养基来传代细胞（直接传代或者稀释后传代）。注意：细胞处于活跃分裂状态时的杀伤效果较好。但细胞过于稠密，其效率会降低，较好将细胞稀释至丰度低于25%。2、每隔3-4天更换含有药物的筛选培养液。3、筛选7天后观察并评估细胞克隆（集落）的形成情况。集落的形成可能还需要一周或者更多的时间（取决于宿主细胞类型，转染，以及筛选效果）。4、挑取并转移5-10个抗性克隆于35mm细胞培养板，继续用含药物的筛选培养液维持培养7天。5、后续更换正常培养基培养即可。Tween20/TBS溶液(1×TBST,pH8.0)用无菌吸管吸掉上层血浆和血小板，不要碰到单个核细胞层。
淋巴细胞分离液：淋巴细胞分离液是一种根据细胞密度差异，借助离心产生的重力加速度，进行细胞的分离纯化的常用试剂。常用的淋巴细胞分离液有Ficoll淋巴细胞分离液、Percoll淋巴细胞分离液。Ficoll与Percoll分离单个核细胞的方法均为密度梯度离心法。分离原理：外周血中单个核细胞和单核细胞,其体积、形态和密度与其他细胞不同，淋巴细胞分离液是一种密度介于1.075~1.090之间而近似于等渗的溶液,用它做密度梯度离心,使一定密度的细胞按相应密度梯度分布，从而将各种血细胞加以分离。淋巴细胞分离液Lymphocyte Separation Medium（human, Ficoll-Paque ）是世界范围内用于体外研究分离人淋巴细胞的实验室公认的标准。
试剂盒的原理：根底是抗原或抗体的固相化及抗原或抗体的酶符号。结合在固相载体外表的抗原或抗体仍保持其免疫学活性，酶符号的抗原或抗体既保留其免疫学活性，又保留酶的活性。在测定时，受检标本（测定其中的抗体或抗原）与固相载体外表的抗原或抗体起反响。用洗刷的办法使固相载体上形成的抗原抗体复合物与液体中的其他物质分隔。再参加酶符号的抗原或抗体，也通过反响而结合在固相载体上。此刻固相上的酶量与标本中受检物质的量呈必定的份额。参加酶反响的底物后，底物被酶催化成为有色产品，产品的量与标本中受检物质的量直接相关，故可根据呈色的深浅进行定性或定量分析。检测试剂盒将抗原、抗体的特异性反应与酶对底物的催化作用相结合起来的一种敏感性很高的试验技术。
当往某些溶液中加入一定量的酸和碱时，有阻碍溶液pH变化的作用，称为缓冲作用，这样的溶液叫做缓冲溶液。弱酸及其盐的混合溶液(如HOAc与NaOAc)，弱碱及其盐的混合溶液(如NH3·H2O与NH4Cl)等都是缓冲溶液。由弱酸HA及其盐NaA所组成的缓冲溶液对酸的缓冲作用，是由于溶液中存在足够量的碱A-的缘故。当向这种溶液中加入一定量的强酸时，H+离子基本上被A-离子消耗:所以溶液的pH值几乎不变;当加入一定量强碱时，溶液中存在的弱酸HA消耗OH-离子而阻碍pH的变化。科研实验中试剂取用应注意事项：余下部分用胶头滴管滴加药液至所需刻度线。TCA(50%w/v)
淋巴细胞分离液是一种根据细胞密度差异，借助离心产生的重力加速度，进行细胞的分离纯化的常用试剂。5´-核苷酸酶(5´-NT)检测试剂盒(钼蓝比色法)
标准物质应在规定的贮存或使用条件下，定期地进行待定特性量值的稳定性检验。稳定性检验的时间间隔可以按先密后疏的原则安排。在有效期间内应有多个时间间隔的监测数据。当标准物质有多个待定特性量值时，应选择那些易变的和有代表性的特性量值进行稳定性检验。选择不低于定值方法精密度和具有足够灵敏度的测量方法进行稳定性检验，并注意操作及实验条件的一致。考察稳定性所用样品应从分装成小包装单元的样品中随机抽取，抽取的样品数对于总体样品有足够的代表性。5´-核苷酸酶(5´-NT)检测试剂盒(钼蓝比色法)
