盐酸金霉素溶液(Chlortetracycline,5mg/ml) 简介： 金 霉 素 (Chlortetracycline) 又 称 氯 四 环 素 ， 是 Benjamin Dugga 从 Streptomyces aureofaciens 金色链霉菌(Streptomyces aureofaciens) 分离出来的一种四环素类。 CAS 号为 57-，分子量为 478.88。金霉素抑菌原理在于与 tRNA 竞争性结合，从而克制蛋 白质合成。临床上，金霉素可以用于革兰阳性菌如金黄色葡萄球菌、化脓性链球菌的传染 以及沙眼的治好 组成： 编号 名称 CA0105 Storage Chlortetracycline solution(5mg/ml) 使用说明书 10ml -20℃ 避光 1份 操作步骤(光供参考)： 1、 根据实验具体要求操作。 2、 一般工作浓度为 10～50μ g/ml。 注意事项： 1、 注意无菌操作，避免污染。 2、 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。检测试剂盒孔底透明度高的固相载体。荚膜染色液(Hiss法)
用液体试剂时要注意什么？在试管里进行某些实验时，取试剂不需要准确用量，只要学会估计取用液体的量即可。例如用滴管取用液体，lmL相当多少滴，5mL液体占一个试管容量的几分之几等。倒入试管里溶液的量，一般不超过其容积的1/3。定量取用液体时，用量筒或移液管。量筒用于量度一定体积的液体，可根据需要选用不同容量的量筒。量取液体后读数时，要使视线与量筒内液体的弯月面的低处保持水平，偏高或偏低都会读不准而造成较大的误差。磷酸盐缓冲液（pH7.4）磷酸缓冲盐溶液具有盐平衡。
Laemmli 加样缓冲液(2×)是一种以溴酚蓝为染料的 2 倍浓缩的蛋白上样缓冲液，主要 由 2-ME、SDS、溴酚蓝、Laemmli 分层缓冲液等组成，可用于不连续蛋白电泳的上样。 组成： 编号 名称 PE0005 5ml Storage Laemmli 加样缓冲液(2×) 使用说明书 4℃ 1份 操作步骤(光供参考)： 1、 取适量的蛋白样品和 Laemmli 加样缓冲液(2×)等量混合，充分混匀。 2、 直接上样到 SDS-PAGE 胶加样孔内即可。 3、 通常电泳至蓝色染料到达 PAGE 胶的底部附近即可停止。 注意事项： 1、 Leagene Laemmli 加样缓冲液(2×)中含少量β-巯基乙醇，有轻微刺激性气味。 2、 为了您的安全和健康，请穿实验服并戴一次性手套操作。 有效期： 12 个月有效。亦可室温短期保存。
弱酸-弱碱型缓冲溶液的构成与配制。这类缓冲溶液的组成为：弱酸+弱酸盐（即共轭碱）、弱碱+弱碱盐（即共轭酸）。常见的实例有：HAc-NaAc、HAc-NH4Ac（微酸性）、NH4Cl-NH3.这类缓冲溶液的实验室配制方法一般是根据溶液组成和浓度要求，直接称取或量取弱酸、弱酸盐溶液或弱碱、弱碱盐溶液来配制。其实，这类缓冲溶液还可以用强酸与弱碱、强碱与酸来配制，归纳起来，应该有三种配制方法：（1）弱酸+弱酸盐，弱碱+弱碱盐例如，HAc-NaAc、NH4Cl-NH3（2）弱酸（过量）+强碱（适量），弱碱（过量）+强酸（适量）例如，HAc（过量）-NaOH（适量）、NH3（过量）-HCl（适量）。这类缓冲溶液需要的共轭碱（NaAc）或共轭酸（NH4Cl）是通过反应后产生的。（3）弱酸盐（过量）+强酸（不足量）或弱碱盐（过量）+强碱（不足量）例如，NaAc（过量）+HCl（适量），NH4Cl（过量）+NaOH（适量）缓冲溶液需要的弱酸（HAc）或弱碱（NH3）则通过反应后产生。检测试剂盒在生物医学各领域的使用规模日益扩展。
单个核细胞分离步骤：Ficoll试剂混匀：首先将Ficoll试剂瓶颠倒多次混匀，使用注射器法吸取Ficoll分离液（去掉聚丙烯盖，插入注射器针头）或吸管法吸取Ficoll分离液（去掉聚丙烯盖，拉起铝环，拉开金属密封，移除银环。拿掉橡胶密封，无菌操作吸取需要的Ficoll分离液）。1.离心管加入3mLFicoll分离液。2.稀释过的血液样本小心铺到Ficoll分离液上面。注：缓慢加入样本，小心不要和Ficoll分离液混合，勿搅动。1.室温条件，水平转子离心400g，离心30-40min，可见细胞分层。2.用无菌吸管吸掉上层血浆和血小板，不要碰到单个核细胞层。3.无菌吸管转移单个核细胞层到无菌离心管。定量取用液体时，用量筒或移液管。氨基酸(AA)检测试剂盒(茚三酮比色法)
利福平溶液怎么配制：加入40ml甲醇，振荡充分混合溶解之后定容50ml，可以涡旋。荚膜染色液(Hiss法)
检测试剂盒样品收集:血清：全血样品于室温放置2小时或4℃过夜后于1000×g离心20分钟，取上清即可检测，收集血液的试管应为一次性的无热原，无内毒液试管。血浆：抗凝剂推荐使用EDTA-Na2，样品采集后30分钟内于1000×g离心15分钟，取上清即可检测。避免使用溶血，血脂高样品。组织匀浆：用预冷的PBS (0.01M, pH=7.4)冲洗组织，去除残留血液（匀浆中裂解的红细胞会影响测量结果），称重后将组织剪碎。将剪碎的组织与对应体积的PBS（一般按1:9的重量体积比，比如1g的组织样品对应9mL的PBS，具体体积可根据实验需要适当调整，并做好记录。推荐在PBS中加入蛋白酶抑制剂）加入玻璃匀浆器中，于冰上充分研磨。为了进一步裂解组织细胞，可以对匀浆液进行超声破碎，或反复冻融。后将匀浆液于5000×g离心5~10分钟，取上清检测。荚膜染色液(Hiss法)
