细胞转染之PEI 转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70-90%)。将细胞置于含 5%CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液(用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA(总量 1-3 μg 为佳),混匀后加入等体积 PEI工作液,充分混匀后室温静置 20-30 min ,较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含 5% CO2的 37℃温箱孵育。细胞易于生长到高密度并合成更多蛋白。长沙正规细胞高效转染试剂产品介绍
细胞电转染实验的几点建议:1. 电场强度要合适合适的电场强度对于电转染实验非常重要,电场强度不能过高,过高会增加细胞的死亡率;也不能过低,过低不能增加膜的通透性或在膜上形成小孔。不同细胞系具有不同的较佳场强值,实验前应测定所转染细胞系的较佳电场强度。2. 细胞状态要好用于电转的细胞一般选取处于对数生长期的细胞(15代以内,传代后2d)。因为处于对数生长期的细胞分裂旺盛,表面结构致密比稳定期的细胞差,电转后,细胞膜的恢复能力强,而且处于有丝分裂期的细胞更容易接受外源DNA.上海细胞高效转染试剂哪家好对于真核生物,转染就是原核生物中转化的同义词。
转染的注意事项:培养基中的物品物品,比如青霉素和链霉素,是影响转染的培养基添加物。这些物品一般对于真核细胞无毒,但阳离子脂质体试剂增加了细胞的通透性,使物品可以进入细胞。这降低了细胞的活性,导致转染效率低。所以,在转染培养基中不能使用物品,甚至在准备转染前进行细胞铺板时也要避免使用物品。这样,在转染前也不必润洗细胞。对于稳定转染,不要在选择性培养基中使用青霉素和链霉素,因为这些物品是GENETICIN选择性物品的竞争性克制剂。另外,为了保证无血清培养基中细胞的健康生长,使用比含血清培养基更少的物品量。 大多数已建立的细胞系都是非整倍体,原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化,这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化,融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如,新鲜融化的NIH 3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率,融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此,如果观察到转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。
细胞转染的常用方法:人工脂质体法 原理:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物,进而可被细胞内吞稳定转染/瞬时性转染。这种方法几乎适用于所有细胞,转染效率高、重复型好,但转染时需要去除血清,转染效果随细胞类型变化大。实验步骤:在单独试管中分别稀释核酸及转染试剂 → 脂质体与核酸的磷酸骨架结合,形成复合物 → 脂质体上的正电荷有助于复合物与细胞膜结合 → 复合物通过内吞作用进入胞浆 → 分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。转染技术转染是将外源遗传物质导入真核细胞的过程,是细胞和分子生物学研究的重要工具。
细胞转染效率低下的几个大坑:1. 细胞污染细胞污染也是造成细胞死亡,转染效率低下的一大原因。首先,转染细胞用的质粒必须保证无菌。而现在市场上的一般的质粒提取试剂盒都做不到较全无菌。毛博这里再贡献一个独门绝招:将提完质粒后或者提的较后一步,用75%乙醇沉淀,这样就除菌了。2.质粒不行转染用的质粒首先要保证数量,一般为2 μg以上。质粒纯度不够或者含有细菌LPS或其他对细胞有毒害作用的物质,也会影响转染效率。这个时候,就应该对质粒进行纯化和浓缩。瞬时转染的细胞中,外源基因得以表达但它们并不会整合到细胞的基因组中。青岛正规细胞高效转染试剂单价
大部分外源DNA会被核酸酶降解或随细胞分裂而稀释。长沙正规细胞高效转染试剂产品介绍
细胞转染的常用方法:细菌转染:原理:对于用脂质体不能实现转染的细胞,可以采用细菌转染。可用于蛋白质过表达或克制,是临床研究中较常用的方法。它通过侵染宿主细胞将外源基因整合到染色体中,可用于难转染细胞、原代细胞的稳定性转染。实验步骤:通过基因克隆生成重组细菌 → 采用非细菌法转染包装细胞系,扩增并分离得到重组细菌颗粒→纯化并滴定细菌液→转导目的细胞(含有细菌特异性的受体)→去除培养物中的细菌,并加入新鲜培养基→分析细胞瞬时基因表达或沉默情况。长沙正规细胞高效转染试剂产品介绍
细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般...