转染效率:线型PEI(LinePEI,LPEI)与其衍生物用作基因转染载体的研究比分枝状PEI(BranchedPEI,BPEI)要早一些,过去的研究认为在不考虑具体条件,LPEI/DNA转染复合物的细胞毒性较低,有利于细胞定位,因此与BPEI相比应该转染效率高一些。但较近研究表明BPEI的分枝度高有利于形成小的转染复合物,从而提高转染效率,但同时细胞毒性也增大。超很高枝的、较柔性的PEI衍生物含有额外的仲胺基和叔胺基,在染实验中发现这种PEI的毒性低,但转染效率却较高。GenEscort是采用各种分枝状和超很高枝状的小分子PEI与各种含有生理条件下可降解键的交联剂交联,合成出的一系列很高枝的可降解的PEI衍生物。聚合物的分枝结构使得其具有较高的正电性,因此易于高效地包裹各种DNA、RNA分子及质粒形成小的纳米颗粒,从而提高转染效率,当所形成复合物进入细胞以后,其中所含的生理条件下可降解的化学键在细胞内水解,使交联聚合物分解为无细胞毒性的小分子PEI,这样结构的转染试剂在体外应用可以获得高的转染效率和低的细胞毒性,其可降解性对体内应用也具有重要的意义。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。杭州天津细胞高效转染试剂
如何高效率实现细胞转染:瞬时转染与稳定转染常规转染技术根据基因表达时间的长短可分为两大类,一类是瞬时转染,一类是稳定转染(很长转染)。瞬时转染的细胞中,外源基因得以表达但它们并不会整合到细胞的基因组中,也就不会被复制。细胞中瞬时转染的外源基因表达时间有限,通常*持续几天,直到外源基因在细胞分裂过程中因各种因素丢失为止。在瞬时转染质粒中往往都含有一个报告基因,来指示细胞中目标基因是否存在,这样的报告基因一般可以在转染后一两天内检测到。南昌细胞高效转染试剂单价*有一部分转入细胞的DNA被转运到细胞核内进行转录并较终输出mRNA到细胞质进行蛋白合成。
细胞转染效率低下的几个大坑:1. 细胞污染细胞污染也是造成细胞死亡,转染效率低下的一大原因。首先,转染细胞用的质粒必须保证无菌。而现在市场上的一般的质粒提取试剂盒都做不到较全无菌。毛博这里再贡献一个独门绝招:将提完质粒后或者提的较后一步,用75%乙醇沉淀,这样就除菌了。2.质粒不行转染用的质粒首先要保证数量,一般为2 μg以上。质粒纯度不够或者含有细菌LPS或其他对细胞有毒害作用的物质,也会影响转染效率。这个时候,就应该对质粒进行纯化和浓缩。
细胞转染实验注意事项:1.如为贴壁生长细胞,一般要求在转染前一日,必须应用胰酶处理成单细胞悬液,重新接种于培养皿或瓶,转染当日的细胞密度以70-90%(贴壁细胞)或2×106-4×106细胞/ml(悬浮细胞)为宜,较好在转染前4h换一次新鲜培养液。2.用于转染的质粒DNA必须无蛋白质,无RNA和其他化学物质的污染,OD260/280比值应在1.8以上。3.培养基中的血清在开始准备DNA和阳离子脂质体试剂稀释液时要使用无血清的培养基,因为血清会影响复合物的形成。其实,只要在DNA-阳离子脂质体复合物形成时不含血清,在转染过程中是可以使用血清的。直到外源基因在细胞分裂过程中因各种因素丢失为止。
影响转染试验的因素:细胞状态变化:(1)转染试剂与细胞不匹配细胞转染较适合的不是原代细胞,也不是传代很多次的细胞。这是因为细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化。这会导致和转染相关的细胞行为的变化。较适合转染的细胞是经过几次传代后达到对数生长期的细胞,细胞生长旺盛,较容易转染。(2)把握时机没错!转染也有适当的时机,相比较非分裂细胞——分裂细胞往往要比静止细胞更易于摄取并表达外源DNA。因此对大多数转染操作而言,细胞都在转染当天或前现在种板。同样重要的是细胞在种板进行转染时不应处于过度生长的状态,如细胞数量过多,互相叠加,营养物质耗竭,代谢废物积聚,转染率低下也是很正常的!转染技术转染是将外源遗传物质导入真核细胞的过程,是细胞和分子生物学研究的重要工具。广州细胞高效转染试剂产品介绍
使用基质珠做为固相支持可以使贴壁细胞悬浮生长。杭州天津细胞高效转染试剂
细胞转染,你至少要掌握以下几点:主要有下面几种方法::化学法:磷酸钙法、DEAE-右旋糖苷法、阳离子脂质体法;物理法:电穿孔法、显微注射法、颗粒传递法;细菌介导法:逆转录细菌、腺细菌A. 阳离子脂质体法:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。特点:简单通用,适用性广,转染效率高,重复性好,但转染时需除血清,转染效率随细胞类型变化大。由于脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会远大于悬浮细胞,所以贴壁比悬浮转染效率要高。悬浮细胞建议使用电穿孔法。B. 电穿孔法:利用高压电脉冲对细胞膜的干扰,使其形成利于核酸进入的微孔。杭州天津细胞高效转染试剂
细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般...