如何高效率实现细胞转染:DNA转染导入细胞胞浆内的DNA 不能穿过细胞核的核膜("核屏障")。在细胞有丝分裂过程中核膜溶解,DNA进入细胞核才有可能。为此,细胞处于分裂期对DNA转染是至关重要的,并且处于分裂期的细胞比例必须尽可能大才能实现高效转染。DNA转染机制示意图如下所示:转染RNA(siRNA/miRNA/mRNA)对于RNA转染是没有"核屏障"的,因为RNA不需要进入细胞核发挥其生物学效应,因此细胞分裂对它没有影响。转染试剂的选择理想的转染试剂选择可以使您的实验如虎添翼!真核细胞的先天免疫系统,使它们能够检测外来物质如脂多糖、细菌或细菌核酸和蛋白质,并克制潜在病原体的入侵。此外,细胞通过信使分子向临近细胞传递发现有害物质的信号。因此,这些临近细胞甚至无需接触病原体即可采取防御方式。这种细胞先天免疫系统也是转染成功的一个障碍。操作简便,对细胞毒性小,转染效率高受到研究者们的青睐。温州正规细胞高效转染试剂
转染的注意事项:细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。一般转染时,贴壁细胞密度为70%-90%,悬浮细胞密度为2×106-4×106细胞/ml时效果较好。确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感,所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。在三种不同密度进行细胞铺板的比较表明铺板密度较高的,CAT活性也较高。得到较高活性所需的LIPOFECTAMINE试剂的量也相应增加了。这些结果说明,对于转染相同量的DNA所需的较佳阳离子脂质体试剂的量会因细胞密度而异。宁波正规细胞高效转染试剂厂家供应脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中。
细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧:一、脂质体(Liposome)转染方法原理脂质体作为体内和体外输送载体的工具,已经研究的十分普遍,中性脂质体是利用脂质膜包裹DNA,借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体,DNA并没有预先包埋在脂质体中,而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上,形成DNA-阳离子脂质体复合物,从而吸附到带负电的细胞膜表面,经过内吞被导入细胞。优点:与其它方法相比,有较高的效率和较好的重复性,它适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前条件下较方便的转染方法之一。
细胞转染之PEI 转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以 1×105 至 4×105细胞/cm2 的密度平铺细胞于 35 mm 培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的 70-90%)。将细胞置于含 5%CO2 的 37℃温箱中孵育 8-24 h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前 2 h 换液(用 1.5 ml 无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA 混合物以 35 mm 组织培养皿用 240 μl 反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120 μl 1×HBS,再加入质粒 DNA(总量 1-3 μg 为佳),混匀后加入等体积 PEI工作液,充分混匀后室温静置 20-30 min ,较后将这 240 μl 的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含 5% CO2的 37℃温箱孵育。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。
细胞转染的注意事项:血清A、DNA-阳离子脂质体复合物形成时不能含血清,因为血清会影响复合物的形成。B、一般细胞对无血清培养可以耐受几个小时没问题,转染用的培养液可以含血清也可以不加,但血清一度曾被认为会降低转染效率,转染培养基中加入血清需要对条件进行优化。C、对于对血清缺乏比较敏感的细胞,可以使用营养丰富的无血清培养基,或者在转染培养基中使用血清。对血清缺乏比较敏感的贴壁细胞,建议使用**转染试剂。有条件的话,可以用无血清培养基代替PBS洗细胞两遍,注意洗的时候要轻,靠边缘缓缓加入液体,然后不要吹吸细胞而是转动培养板让液体滚动在细胞表面。如果洗的太厉害,细胞又损失一部分,加了脂质体后,细胞受影响就更大了,死亡细胞会增多。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物。开封正规细胞高效转染试剂平均价格
瞬时转染的细胞中,外源基因得以表达但它们并不会整合到细胞的基因组中。温州正规细胞高效转染试剂
细胞转染的原理、操作步骤以及小技巧:脂质体转染操作步骤:(1)细胞培养:取6cm细胞皿,向每孔中加入2mL含1~2×105个细胞培养液,37℃ CO2培养密度至40%~60%,密度过大,转染后不利筛选细胞。(2) 转染液制备:在EP管中制备以下两液(为转染每一个孔细胞所用的量)A液:用不含血清培养基稀释1ug 质粒DNA。B液:用不含血清培养基稀释2ul脂质体。分别将A液与B液轻弹混匀,静置5分钟。(3)吸取B液加入至A液中,轻弹混匀。室温中置10-15分钟。(4)转染准备:用1mL不含血清培养液漂洗两次,再加入4mL不含血清培养液。(5)转染:把A/B复合物缓缓加入培养液中,摇匀,37℃温箱置6~24小时,吸除无血清转染液,换入正常培养液继续培养。(6)瞬时转染后,可在48h-72h细胞长满之后,提取细胞蛋白或者RNA,验证敲减/过表达效率。温州正规细胞高效转染试剂
细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般...