细胞培养注意事项及常见问题解答:无菌操作细胞培养较看重的就是无菌操作,无菌操作是细胞培养是否成功的关键点。1、使用前用75%的乙醇擦拭细胞间的桌面、超净台、孵箱和离心机等;紫外照射细胞间和超净台30分钟以上才可以进入使用。2、进入细胞间必须穿上隔离服或者细胞间**的白大衣,戴上手套和口罩,换上拖鞋,严格意义上来说,帽子也是要带的。除了隔离服,其他穿着物品较好一次性使用。3、凡是放入超净台中的不是一次性使用的物品事先都需要经过高压灭菌;不能进行高压处理的物品也需要经过75%的乙醇消毒。包括酒精灯、吸管、移液器、试管架、培养皿、废液缸等。4、操作过程中尽量接近酒精灯;用镊子拿取头、离心管、吸管等物品时,避免碰到使用端;不要在开口器皿的上端进行操作。原代细胞是指从机体取出后立即培养的细胞。贵阳原代细胞分离试剂盒进货价
原代细胞培养实验室常规步骤为: 1)将动物组织从机体中取出并消毒除去存留在组织上的细菌、细菌、等污染源,这些污染源将会所需培养的原代细胞凋亡、停止生长和繁殖直至死亡,因此整个原代细胞培养过程中较全在无菌状态下进行。2)将组织块在选定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分钟, 通常在37C水浴里进行,而蛋白酶的选定取决于部位组织和所需细胞的类型,比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出单个细胞, 但是对于脑组织和乳腺等软组织,就只能用分解能力较弱的胶原蛋白酶, 以免损伤分散出来的单个细胞。3)将分散而成的单个细胞置于合适的培养基(含有特殊细胞生长因子、添加剂以及血清, 或者无血清培养基)中培养,使细胞得以生存、生长和繁殖, 整个过程都是在无菌情况下操作。重庆正规原代细胞分离试剂盒进货价用专门的原代细胞培养基进行培养,较大限度提高原代细胞的生长。
原代细胞的培养条件:静置贴壁细胞(包括半贴壁细胞的培养)培养:a.细胞要通过充分漂洗,以尽量除去消化液的毒性。b.细胞接种时浓度要稍大一些,至少为5×108细胞/L。c.培养基可用Eagle(MEM Corning 10-010-CVR)或DMEM(Corning 10-013-CVR)培养。d.胎牛血清浓度为10%-80%。e.应在37℃5% CO2的培养箱中培养。f.在起始的2天中尽量减少振荡,以防止刚贴壁的细胞发生脱落,漂浮。g.待细胞基本贴壁伸展并逐渐形成网状,应将原代细胞换液。h.用骨髓或外周血中的悬浮细胞经静置培养1周时,应将细胞悬液经低速离心后换液。
原代细胞的培养与建系 细胞的来源多样,培养方法也各不相同,凡是来源于胚胎、组织部位及外周血,经特殊分离方法制备而来的原初培养的细胞称之为原 代细胞。原代细胞经分散接种之手段称为传代。凡能经传代方式进行再次培养的细胞称为传代细胞。若能稳定生长传至 10~20 代以 上的细胞可确立为细胞系。若有条件能开展单细胞克隆、纯化,经大量扩增后所形成的生物学特性稳定的克隆化细胞群,称之为细胞 株或克隆细胞。此过程称为细胞的纯化或细胞克隆。这些基本技术是从事细胞培养工作的基础,只有熟悉和掌握了基本技术,才可能更 快捷地学习和掌握其他方法,本章重点叙述常用的基本技术。 靠前节 原代细胞的取材 人和动物细胞的取材是原代细胞培养成功的首要条件,是进行细胞培养的靠前步,若取材不当,将会直接影响细胞的体外培养。永生化细胞系通常具有更快的倍增时间并可持续地分裂。
使用RFect 系列小核酸转染试剂做siRNA/miRNA转染测实验注意事项:1.细胞接种:一般做转染前现在接种/铺板(细胞计数大约5*10^4cell/ml),使做转染前细胞密度在30-50%;如果细胞是原代细胞,接种密度可以密一些,细胞计数在2*10^6cell/ml;悬浮细胞可以在转染当天接种/铺板(细胞计数大约5*10^4cell/ml),待细胞状态稳定后做转染前细胞密度30-40%。2.为了能在使用时有较好的转染效果,靠前次使用建议您用24孔板做,每孔2ul转染试剂即可。将较佳转染条件(siRNA与转染试剂的用量、比例)放大到对应的孔板即可。会极大提高原代培养的细胞在体外存活率。徐州原代细胞分离试剂盒厂家直销
使用这种方式需注意勿使搅拌速度过快,否则即可使培养液溢出又容易造成污染。贵阳原代细胞分离试剂盒进货价
细胞培养注意事项及常见问题解答:传代1、贴壁细胞传代时,先用消化液润洗一遍;弃掉后,再加入适量消化液置于孵箱或镜下观察消化;当细胞变圆,彼此之间产生空隙,加入等量或大量的培养基终止消化,培养基中的血清可以克制胰蛋白酶的活性。2、这里我没有明确提到胰蛋白酶的浓度,并不是说浓度越高越好。胰蛋白酶底物的特异性差,会破坏细胞膜成分。PH8.0,37度环境下,消化液的消化能力是较强的。培养基中的血清会降低胰酶的消化能力,所以每次消化前,也要用PBS反复冲洗干净培养皿。日常用的比较多的消化液浓度:a)0.25%胰蛋白+0.02%EDTA。贵阳原代细胞分离试剂盒进货价
原代细胞培养实验室常规步骤为:1)将动物组织从机体中取出并消毒除去存留在组织上的细菌、细菌、等污染源,这些污染源将会所需培养的原代细胞凋亡、停止生长和繁殖直至死亡,因此整个原代细胞培养过程中较全在无菌状态下进行。2)将组织块在选定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分钟,通常在37C水浴里进行,而蛋白酶的选定取决于部位组织和所需细胞的类型,比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出单个细胞,但是对于脑组织和乳腺等软组织,就只能用分解能力较弱的胶原蛋白酶,以免损伤分散出来的单个细胞。3)将分散而成的单个细胞置于合适的培养基(含有特殊细胞生长因子、添加剂以及血清,或者无血清培养基)中培养,使细胞得...