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糖原染色：1、概况PAS染色法（Periodic Acid-Schiff stain）在组织学上，主要用来检测组织中的糖类。过碘酸把糖类相邻两个碳上的羟基氧化成醛基，再用Schiff试剂和醛基反应使呈现紫红色。2、原理PAS染色又称过碘酸雪夫染色，糖原染色。一般用来显示糖元和其它多糖物质。过碘酸能使细胞内的多糖乙二醇基氧化成二醛，再与Schiff氏液的无色品红结合，红色，定位于胞浆上。3、应用随着医学实验技术的发展，糖原染色应用的范围更加普遍，如用以证明与鉴别细胞内空泡状的性质，心肌病变及其他心血管疾病的诊断 ，糖原累积病诊断和研究 ，糖尿病的诊断和研究 ，用于某些的诊断等。操作简单方便，1h内即可完成反应。湖南提供糖原染色试剂盒哪里买

特殊染色方法选择应遵循：1、特异性高、传统或经典的染色方法；特异、传统/经典的一些染色法在特殊染色方法的选择中往往作为选择。如显示淀粉样物质。刚果红染色作为经典的方法，比天狼星红、甲基紫等其他方法都要实用。淀粉样物质（刚果红及天狼星红染色）。2、染色流程相对简便、染液易配制的染色方法；选择染色流程简便的方法，无论对于量较多的整批次染色，还是较少量的染色均能够节省时间、更为便捷。选择染液易配制的方法，对自配染液（尤其是保存较短的染液）是较为重要的选择，不容易造成因染液配制问题而影响染色结果。如显示弹性纤维。醛品红染色法无论是从染色流程，还是染液配制都要比铁苏木精、间苯二酚碱性品红等染色方法要简单方便、省时，同时阳性着染对比度也很明显。浙江咨询糖原染色试剂盒厂家供应可以观察肾小球基底膜、结肠杯状细胞中性黏液物质、阿米巴滋养体和霉菌的着色。

糖原染色――检查项目的注意细节：其判断标准随细胞不同而异，一般分为5级，即0～4级。糖原染色――检查项目的一般步骤：(1)新鲜干燥血片或骨髓片于95%乙醇中固定10min，蒸馏水冲洗数次，待干。(2)浸入10g/L过碘酸水溶液中10min，蒸馏水冲洗数次，待完全干燥。(3)放入雪夫液30min，用自来水冲洗约5min，再用蒸馏水冲洗，然后用20g/L甲基绿复染20min，水洗，晾干。糖原染色――检查项目结果解读：(1)新鲜干燥血片或骨髓片于95%乙醇中固定10min，蒸馏水冲洗数次，待干。(2)浸入10g/L过碘酸水溶液中10min，蒸馏水冲洗数次，待完全干燥。(3)放入雪夫液30min，用自来水冲洗约5min，再用蒸馏水冲洗，然后用20g/L甲基绿复染20min，水洗，晾干。

糖原及粘液染色法注意事项：1、 糖原的固定要及时，而且标本要新鲜。2、如用无水酒精作糖原的固定剂，有它的弊病，因无水酒精渗透较慢，而且容易产生极化，（极化是糖原颗粒趋向于细胞的一端）。故用Gendre氏固定液效果较佳，其配法如下：苦味酸饱和于95%酒精85ml40%甲醛 10ml冰醋酸 5ml3、各种试剂必须化学纯，亚硫酸钠须有浓厚气味，器皿必须洁净而干燥，染色缸亦是。4、如果Schiff氏试剂，在经过活性碳吸附漂白后不显无色，首先应考虑试剂中的偏重亚硫酸钠是否失效。如果偏重亚硫酸钠气味不浓，使用时可考虑适当的增加用量。其次考虑碱性品红本身，常常虽属同一生产厂家，但不同批号，其效果就可能不同，应特别引起注意。将动物杀死后迅速取出所需要的组织。

GUS染色步骤：1.将准备好的材料浸泡在GUS染色液中，于25-37℃保温1小时至过夜。 2.叶片等绿色材料转入70%乙醇中脱色2-3次，至阴性对照材料呈白色。 3.肉眼或显微镜下观察，白色背景上的蓝色小点即为GUS表达位点。注：用于染色的植物材料的制备方法要因涉及的特定组织和部位的不同而异。例如，拟南芥的根、花和叶片以及幼苗的根就可以不作任何预处理而直接染色。但是像和马铃薯这些植物的茎和叶就必须在染色前切成薄片（1-3mm）。当操作大的组织和样品时，可以选用真空渗入法来帮助底物和酶渗入细胞。对临床样本进行染色，以便样本的进一步筛查和检测。江苏哪家提供糖原染色试剂盒推荐厂家

糖原在肝脏及心肌疾患及某些的病变中分布和量都有一定改变。湖南提供糖原染色试剂盒哪里买

注意事项：染色时：①染色时必须严格按照染色操作说明书进行染色。②在染色过程中，前一个染液浸染完成后，在进行下一个染液的步骤之前，必须彻底充分水洗，使前一个染液冲洗干净后再进行下一步骤。③ 每次滴加染液前，务必吸干组织上多余的水分，避免多余的水把染液稀释了，造成染色不佳。④在滴加染液时，务必使染液完全覆盖组织，但不能溢出圈外，避免浪费试剂。在染色时，用有色铅笔在组织周围划一个圈，这样在滴加染液时就不会使染液溢出。湖南提供糖原染色试剂盒哪里买

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