原代细胞的培养与建系细胞的来源多样,培养方法也各不相同,凡是来源于胚胎、组织部位及外周血,经特殊分离方法制备而来的原初培养的细胞称之为原代细胞。原代细胞经分散接种之手段称为传代。凡能经传代方式进行再次培养的细胞称为传代细胞。若能稳定生长传至10~20代以上的细胞可确立为细胞系。若有条件能开展单细胞克隆、纯化,经大量扩增后所形成的生物学特性稳定的克隆化细胞群,称之为细胞株或克隆细胞。此过程称为细胞的纯化或细胞克隆。这些基本技术是从事细胞培养工作的基础,只有熟悉和掌握了基本技术,才可能更快捷地学习和掌握其他方法,本章重点叙述常用的基本技术。靠前节原代细胞的取材人和动物细胞的取材是原代细胞培养成功的首要条件,是进行细胞培养的靠前步,若取材不当,将会直接影响细胞的体外培养。大多数组织可以制备原代细胞,但生长的快慢及难易程度不一。金华昆明原代细胞分离试剂盒
原代细胞培养问题:冻存的细胞该如何开始培养:(1)将一管细胞从液氮罐中取出,注意保护手和眼睛。(2)将冻存管快速的放入37℃水浴中,轻轻握住并旋转,直到管内物体完全融化。(3)将冻存管立即从水浴中拿出,擦干,转入无菌环境。(4)用70%的酒精冲洗冻存管,然后擦去多余酒精。(5)打开盖子,注意手指不要碰到里面的螺纹(注意,由于冻存管有负压,开盖时可能会有少量溢出,这是正常现象)。(6)用多聚赖氨酸(或参照说明书)包被培养瓶。多数细胞推荐的接种密度为每平方厘米5000个细胞。金华昆明原代细胞分离试剂盒会极大提高原代培养的细胞在体外存活率。
原代细胞的小知识:1.解冻原代细胞对解冻过程非常敏感,因此将小瓶置于37℃水浴锅中,保持并轻轻旋转直到内容物刚刚解冻是很重要的。然后应立即从水浴中取出小瓶,并转移到无菌操作台。确保您的培养瓶在解冻前已经准备就绪,以便可以立即用于接种细胞,并置于培养箱中,我们在使用cellsystems的原代视网膜内皮细胞时,复苏的时候没有去离心,第二天换个液就可以。2.传代原代细胞有间隙克制接触不良反应,所以细胞不能到达100%的密度的时候传代,一般较有效的建议观察细胞的生长周期,CellSystems的原代细胞在细胞密度达到85%左右的时候传代较佳,当生长至100%汇合时,它就会衰老。记住,所有的原代细胞不是100%纯,因此我们要尽量减少污染细胞的生长。当细胞传代时,使用低浓度的胰蛋白酶,也可以尝试下cellsystems的整体消化套装哦(品牌:cellsystems,货号:4Z0-800)并在显微镜下密切监测细胞。此外,记得在胰蛋白酶消化后完全中和细胞中的胰酶,因为任何活性的胰蛋白酶都将损伤细胞。
原代细胞的获取:酶消化法:所用试剂:胶原酶和胰酶。胶原酶的配制:建议看相关的文献进行胶原酶的配制。小编常用的是DMEM进行配制,配制好的胶原酶消化液放置在37℃水浴锅内预热(注意现用现配)。胰酶(酶联合法获取原代细胞中会加入胰酶,相关文章也蛮多的)胶原酶消化时间:根据组织特性,消化时间会有差异。以小鼠肾细胞为例,加入胶原酶Ⅰ进行消化后,放入37℃培养箱中消化45min~1h左右,期间每10min中震荡一次,知道组织块几乎完全消失为止(若是组织块剪得非常细小,时间可以短一些,30min左右即可)。给培养液中加入低浓度的透明质酸复合物。在有搅拌装置的培养器皿内加入培养液。
原代细胞转染实验要点:转染过程不可添加物品,否则会导致细胞死亡;开始实验siRNA的用量设置在终浓度10nM、30nM、50nM、100nM进行摸索,后续实验根据实验结果修改。RFectPM可用来转染siRNA、antisenseRNA、microRNA等200bp以内的小分子RNA和DNA,可转染绝大多数原代细胞。对于大多数原代细胞,RFectPM的细胞转染阳性率都在80%以上,而转染细胞死亡率不到10%。RFectPM的使用也极其简便,先将sRNA与RFectPM室温混合,再将siRNA-RFectPM混合物直接加入含培养基的细胞,血清对转染效果没有影响,不必刻意添加或更换培养液。适当增大原代培养接种的细胞密度。金华昆明原代细胞分离试剂盒
只用于某些特定的细菌如猪传染性肠胃炎细菌的培养。金华昆明原代细胞分离试剂盒
使用RFect系列小核酸转染试剂做siRNA/miRNA转染测实验注意事项:1.细胞接种:一般做转染前现在接种/铺板(细胞计数大约5*10^4cell/ml),使做转染前细胞密度在30-50%;如果细胞是原代细胞,接种密度可以密一些,细胞计数在2*10^6cell/ml;悬浮细胞可以在转染当天接种/铺板(细胞计数大约5*10^4cell/ml),待细胞状态稳定后做转染前细胞密度30-40%。2.为了能在使用时有较好的转染效果,靠前次使用建议您用24孔板做,每孔2ul转染试剂即可。将较佳转染条件(siRNA与转染试剂的用量、比例)放大到对应的孔板即可~金华昆明原代细胞分离试剂盒
原代细胞培养实验室常规步骤为:1)将动物组织从机体中取出并消毒除去存留在组织上的细菌、细菌、等污染源,这些污染源将会所需培养的原代细胞凋亡、停止生长和繁殖直至死亡,因此整个原代细胞培养过程中较全在无菌状态下进行。2)将组织块在选定的蛋白酶溶液中浸泡20-30分钟,通常在37C水浴里进行,而蛋白酶的选定取决于部位组织和所需细胞的类型,比如成骨、肌肉、心、肝等就需要用胰蛋白酶才能解而出单个细胞,但是对于脑组织和乳腺等软组织,就只能用分解能力较弱的胶原蛋白酶,以免损伤分散出来的单个细胞。3)将分散而成的单个细胞置于合适的培养基(含有特殊细胞生长因子、添加剂以及血清,或者无血清培养基)中培养,使细胞得...