试剂抗干扰作用的合理性有些液体双试剂，其实质并不真正具备抗干扰的能力而只是解决了试剂的液体化和稳定性问题。如，ALT检测试剂盒中，NADH在pH7.5~7.8水溶液中极不稳定，在pH>8.7时才能稳定保存。因此，为了保证试剂稳定性，液体双试剂的R1需要维持pH>8.7，但此时LDH活性很大程度下降，就失去消除内源性酸的功能，只有加入试剂R2后，反应混合液的pH下降至LDH适pH，在经过延迟时间60 S后，才能消除内源性酸的干扰。再如，Tfinder反应中抗Vc干扰问题：由于维生素c易氧化，样品中Vc会竞争反应生成的过氧化氢，而产生负干扰。因此，在试剂R1中加入抗坏血酸氧化酶，这种方法是有效的，但不一定有很大的意义。在启用检测试剂盒之前，应重复检测阴性和阳性对照品和样品。甲醇制KH滴定液(0.5mol/L)
酶的校正：要满足在同一方法学、同一测定条件、与理论计算的FACTOR值差异不大，没有发现有明显影响因素，方可 进行校正。检验结果溯源性，得建立一个可靠的参考系统作为准确性基础，然后将准确性转移到常规方法测定中去，使常规方法测定结果可溯源到参考系统所提供的准确性基础上来。在实现溯源性目标过程中，永远以患者新鲜标本为实验对象，以方法学对比试验方法为验证手段。方法学对比试验常采用回归方程进行统计分析，假如斜率接近1，截距较小，这意味着实验室常规方法对标本测定结果和溯源目标参考系统对标本检测结果非常接近。HAT Media Supplement(50×)磷酸缓冲盐溶液具有盐平衡。
检测试剂盒具有灵敏、特异、简单、快速、稳定及易于自动化操作等特点，而且因为一日之内能够检查几百乃至上千份标本，因此在生物医学各领域的使用规模日益扩展。在检测试剂盒中一般有3次加样步聚，即加标本，加酶结合物，加底物。加样时应将所加物加在检测试剂盒板孔的底部，防止加在孔壁上部，并注意不行溅出，不行产生气泡。加标本一般用微量加样器，按规则的量参加板孔中。每次加标本应更换吸嘴，以免发作交叉污染，也可用一次性的定量塑料管加样。
从滴瓶中取用少量试剂。瓶上装有滴管的试剂瓶称作滴瓶。滴管上部装有橡皮头，下部为细长的管子。使用时，提起滴管，使管口离开液面，用手指紧捏滴管上部的橡皮头，以赶出滴管中的空气，然后把滴管，伸入试剂瓶中，放开手指，吸入试剂。再提起滴管将试剂滴入试管或烧杯中。将试剂滴入试管中时，可用无名指和中指夹住滴管，将它悬空地放在靠近试管口的上方，然后用大姆指和食指掐捏橡皮头，使试剂滴入试管中。禁止将滴管伸入试管中。否则，滴管的管端将很容易碰到试管壁上面沾附了其他溶液。以致使试剂被污染。BCA蛋白检测试剂盒有许多优点：检测的灵敏度高。
说明检测试剂盒的具体规则：要确保微量加样器的准确性，能够运用蒸馏水和电子天平进行确认(因为蒸馏水不含杂质，温度环境为20%左右时，lmL的水能够看作是lg、200L的水能够看作是0.2g)每一把微量加样器都应该将其高量程和低量程进行确认。在运用微量加样器时，汲取不同瓶子中液体后要更换头，即便汲取规范品溶液。汲取液体时速度不易太快，检测试剂盒避免发生气泡，汲取的量不够准确。将液体加到酶标孔中时，避免头和孔内液体触摸，可使头上的液滴和孑L壁触摸，液滴会自然流下去。吸入液体时的的办法是吸两档打一档，避免因为头的毛细效果使得部分液体不能流出而形成的误差。一般盐雾标准中要求试验过程中的盐雾收集液pH值在6.5~7.2之间。红细胞裂解液(RBC Lysis Buffer,10×)
检测试剂盒如为有菌操作，则主张冰冻保存。甲醇制KH滴定液(0.5mol/L)
检测试剂盒变质的原因：方法学的影响。测定模式包括以下几种：双抗体夹心法、间接法、双抗原夹心法、IgM抗体捕捉法、竞争抑制法，其中竞争抑制法(HBeAb,HBcAb等采用)因受操作时差所引起的竞争等因素的影响，结果重复性较差，质量较难控制。试剂因素。不同批次的试剂在制作过程中很难保证质量完全一致，即使是通过批批检的项目其检测结果也存在差异，因此必须选择和订购长批号的试剂，并保证保存条件。严格执行这一标准可以避免因试剂批号改变而重新建立质控体系及重新评估试剂的复杂过程，并且能够保证结果的稳定性；对于效期短、使用率低的试剂，应当小量分装，每次使用则取分装部分即可，避免反复冻融造成试剂的失效。甲醇制KH滴定液(0.5mol/L)
