培养方法：1.体外分离获得瘤浸润淋巴细胞（tumor infiltrating lymphocytes, TIL）。2.活化阶段：用培养液调节成1*106/ml接种于孔板中，加入IL-2（1000U/ml），在37℃，5%CO2条件下培养。注：一般培养的初期（7天左右）细胞无明显生长，为生长克制期。由于瘤本身固有的生物学特性、瘤抗原性及淋巴细胞浸润程度等，体外增殖前期会受到不同程度的克制；前期需尽快去除瘤细胞，如重量沉降法及贴壁去除法等，需具体情况具体分析。（前期处理有学者采用PHA、胰岛素、胰素等不同方法刺激）3.增殖阶段：细胞增殖到107后，用CD3单抗（30ng/mL）、CD28（30ng/mL），加入经180Gy辐射的健康供者PBMC（1*108）的培养瓶中，刺激第二天，加入IL-（4000U/ml）快速扩增。外用液体试剂的溶剂和分散介质常用饮用水、适宜的有机溶剂。磷酸盐缓冲液（pH7.8-8.0）
已知准确浓度的溶液，在容量分析中用作滴定剂，以滴定被测物质。如果试剂符合基准物质的要求 (组成与化学式相符、纯度高、稳定)，可以直接配制标准溶液，即准确称出适量的基准物质，溶解后配制在一定体积的容量瓶内。可由下式计算应称取的基准物质的重量W：W=ΜV·基准物质的摩尔质量。式中Μ和V分别为所需配制的溶液的摩尔浓度和体积。利用上式可计算出标准溶液的浓度。如果试剂不符合基准物质的要求，则先配成近似于所需浓度的溶液，然后再用基准物质准确地测定其浓度，这个过程称为溶液的标定。甲苯胺蓝水溶液（0.1%）检测试剂盒变质的原因：样本因素。
检测试剂盒第二个影响洗刷作用的主要参数是洗刷循环的量。当然，洗刷次数越多，布景越低。可是，太屡次的洗刷会下降信号强度，使其难以测定。一般的做法是在每次抗体或抗原孵育后重复洗刷三次。不过，板的制造商会对洗刷次数提出建议。一般来说，制造商包被平板需求的洗刷次数比用户包被的平板要少。关于用户包被的板，有必要优化洗刷次数。控制洗刷量和洗刷次数的另一种方法是参与过量的洗刷液。一般来说，96孔板的每个孔能包容330至460 µl。不过，有些自动化洗板机可设置程序，检测试剂盒分配远远超出这个量的洗刷液，比方1 ml。它是怎样做到的呢？其实很简单，就是在分液的一起翻开吸液功用。换句话说，进口检测试剂盒跟着分液器分配更多的液体，抽吸器也将液体吸出。这种技术能增加洗刷量，但不会溢出到其他孔中。
在缓冲溶液中加入少量强酸或强碱，其溶液pH值变化不大，但若加入酸，碱的量多时，缓冲溶液就失去了它的缓冲作用。这说明它的缓冲能力是有一定限度的。缓冲溶液的缓冲能力与组成缓冲溶液的组分浓度有关。0.1mol·L-1HAc和0.1mol· L-1NaAc组成的缓冲溶液，比0.01mol·L-1HAc和0.01mol·L-1NaAc的缓冲溶液缓冲能力大。关于这一点通过计算便可证实。但缓冲溶液组分的浓度不能太大，否则，不能忽视离子间的作用。组成缓冲溶液的两组分的比值不为1∶1时，缓冲作用减小，缓冲能力降低，当c(盐)/c(酸)为1∶1时△pH小，缓冲能力大。不论对于酸或碱都有较大的缓冲作用。检测试剂盒准确度是测定值与实在值挨近的程度。
BMC原代分离步骤：1) 抽取人的外周血于肝素抗凝管中，取足5mL新鲜血液，加入PBS按1：1稀释血液（一般**管2mL+2mL）。2) 取淋巴细胞分离液5mL于15mL灭菌离心管中待用。3) 吸取稀释血液，在离分层液上方1cm处，沿试管壁徐徐加入，使稀释血液重叠于分层液上，并与分离液形成明显界面。4) 室温，离心2000rpm，20min。此时离心管中形成5层：较上面是血浆，血浆层和淋巴细胞分离液之间是淋巴细胞层呈白膜状。5) 小心吸取中间呈白膜状的单个核细胞层，尽量全部吸出单个核细胞。加5倍以上体积的PBS洗2次，每次离心1500rpm，10min。已知准确浓度的溶液，在容量分析中用作滴定剂。锌滴定液(0.05mol/L)
注意事项：尽注意无菌操作，避免污染。磷酸盐缓冲液（pH7.8-8.0）
两性霉素B溶液（10mg/ml）：注意事项：两性霉素B作用原理在于其与菌类细胞膜上的Ergosterol结合导致细胞膜通透性发生变化，使菌类细胞内钾离子、氨基酸通透到到膜外，破坏菌类正常代谢，进而使菌类细胞死亡。储存条件：4℃，避光，12个月。两性霉素B又称庐山霉素，是从链霉菌(Streptomycesnodosus)的培养液中分离而得的一种多烯类克菌类，其抑菌机制是能与菌类细胞膜上的麦角甾醇结合，导致细胞膜受损，通透性提高，细胞内物质外漏，破坏正常代谢而起抑菌作用。细菌因其细胞膜上不含麦角甾醇成分，故无效。两性霉素B克菌类谱广，几乎对绝大部分菌类均有效，耐药菌株少见，高浓度时呈杀菌作用。两性霉素B溶液在室温不稳定，易被光、热和酸破坏，在pH6.0～7.5下克菌作用很好。磷酸盐缓冲液（pH7.8-8.0）
