氨苄青霉素溶液配置：组分浓度 100mg/ml 氨苄青霉素。配制量 50ml。配制方法：1．称取5g Ampicillin置于50ml塑料离心管中。2．加入40ml灭菌水，充分混合溶解之后定容至50ml。3．0.22μm滤膜过滤除菌，小份分装（1ml/管）后，置于－20℃保存。氨苄青霉素为白色晶体或粉末，分子式是C16H19N3O4S,分子量为349.41。溶于稀酸和稀碱，微溶于水和甲醇，几乎不溶于氯仿、96%乙醇、、乙酸乙酯和固定油。无臭，味苦。抗革兰氏阳性及阴性菌，用于分子生物学和组织培养（防止微生物污染和抗性筛选）。杀灭曲线的建立：每3-4天更换新的含药物培养基。荧光示踪灌注固定液
丁胺卡那霉素给药说明：1.患者应给予足够的水分，以减少肾小管损害。2.烧伤患者中本品的半衰期较短（1—1.5小时），因此可能需用5—75mg/kg，每6小时一次。3.长期用药可能导致耐药菌过度生长。4.配制静脉用药时，每500mg加入氯化钠注射液，5%葡萄糖注射液或其他灭菌稀释液100—200ml，上述溶液用于成人病例应在30一60分钟内，婴儿患者于1一2小时内缓慢输入，并相应减少稀释液量。本品不可直接静脉推注，以免产生神经肌肉阻滞和呼吸克制作用。淀粉水解培养基丁胺卡那霉素给药说明：患者应给予足够的水分，以减少肾小管损害。
用亚甲基蓝溶液染色后，被染为深蓝色的部分是（细胞核）亚甲基蓝可以结合核酸，使细胞核呈蓝色。 台盼蓝能使死细胞着色机理：正常的活细胞，胞膜结构完整，能够排斥台盼蓝，使之不能够进入胞内；而丧失活性或细胞膜不完整的细胞，胞膜的通透性增加，可被台盼蓝染成蓝色。通常认为细胞膜完整性丧失，即可认为细胞已经死亡。因此，借助台盼蓝染色可以非常简便、快速地区分活细胞和死细胞。台盼蓝是组织和细胞培养中较常用的死细胞鉴定染色方法之一。
检测试剂盒实验经验分析：吸取液体时，要用量程和需要量接近的去吸，减少误差。将液体加到酶标孔中时，避免头和孔内液体接触，可使头上的液滴和孔壁接触，液滴会自然流下去（应该是加样的时候，板上稀释不算的吧）。液体全部加完后，可将酶标板在桌子上平行轻轻晃动30秒，混匀液体。也可以用酶标仪的晃动功能（注意是平行晃动，即上下or左右）。温浴时，要用不干胶或胶带纸封好酶标板，防止水分的蒸发（老办法是放入湿盒内，纱布加点无菌水即可）。一般植物细胞筛选浓度在 20～200μ g/ml，动物细胞筛选浓度 50～1000μ g/ml。
使用方法：1， 固定细胞或组织样品，经过固定后，适当洗涤除去固定剂。如果需要进行免疫荧光染色，可先进行免疫荧光染色，染完毕后再进行染色。如果不需要进行其它染色，则直接进行染色。 2， 对于贴壁细胞或组织切片，加入少量染色液，覆盖住样品即可。对于悬浮细胞，至少加入待染色样品体积 3 倍的染色液，混匀。 3， 室温染色 5-10 分钟。 4， 吸除染色液，生理盐水洗涤 2-3 次，每次 3-5 分钟。 5， 置于荧光显微镜下观察，激发波长 360-400nm。 溶液注意事项： dapi 被普遍认为具有致性，操作时应戴手套，并避免交叉污染。 本产品需避光，并尽量避免反复冻融。荧光染料都存在淬灭问题，建议染色后尽量当天完成检测。 为减缓荧光淬灭可以使用抗荧光衰减封片剂。检测试剂盒操作注意事项：实验中不用的板条应立即放回包装袋中，密封保存，以免变质。荧光示踪灌注固定液
检测试剂盒准确度是测定值与实在值挨近的程度。荧光示踪灌注固定液
LISA检测试剂盒实验结果分析的三个小建议:实验中样品都要做复孔或三孔，然后计算每个浓度标准品的平均OD值，复孔的变异系数应该小于20%。平均OD值减去空白孔的OD值。制作标准曲线。 以减去本底后的OD值为X轴，标准品的浓度为Y轴，利用作图软件得出一个合适的计算方法。建议使用合适的软件来作图，比如CurveExpert 1.4。这款软件能够给出很多种方法（比如直线、半对数、对数、四参数方程等）并从中选择一条合适的方程。要想检验某条曲线是否与表中数据吻合，可以将标准品的浓度作为未知数，将对应的OD值带入该方程，计算出标准品的浓度，得到的结果应该与实际浓度很接近（+/-10%）。选择拟合度高的那条曲线。荧光示踪灌注固定液
