瞬时转染和转染效率的监测:基因的瞬时表达在24-72小时内就结束了。这种快速的瞬时表达非常适用于验证质粒表达和监测转染步骤的效率。可以使用报告基因来确定优化条件,其表达蛋白易检测,在目的细胞中不含此蛋白或水平很低。常用的报告基因包括氯霉素乙酰转移酶(CAT),绿色荧光蛋白(GFP),荧光素酶(Lux或Luc)以及b-半乳糖苷酶(b-gal)。可以使用简单的非同位素方法检测b-gal的表达以测定转染效率和活性。pCMVSPORT-bgal质粒包含CMV启动子调控下的LacZ基因,转染入真核细胞内后可以直接表达bgal。结合简单的检测步骤,可以做为监测转染条件的一种方便灵敏的方法来指示细胞中目标基因是否存在,这样的报告基因一般可以在转染后一两天内检测到。济南正规细胞高效转染试剂厂家现货
影响转染试验的因素:1.转染试剂跟细胞系不匹配转染试剂跟细胞系也是讲究配合默契的,使用同一种试剂,不同细胞系转染效率通常不同。但细胞系的选择通常是根据实验的需要,因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献,通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然,较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。因为有些细胞系是不稳定的,可能随着培养时间的改变,培养条件的不同,不同的选择压力,可能引起不同的克隆选择。因此就算是同一个细胞系,在不同条件下转染能力的差异可能会很大。济南细胞高效转染试剂厂家现货使用基质珠做为固相支持可以使贴壁细胞悬浮生长。
大多数已建立的细胞系都是非整倍体,原代培养包括了表达不同基因组合的细胞的混合物。细胞培养在实验室中保存数月和数年后会经历突变,总染色体重组或基因调控变化等而演化,这会导致和转染相关的细胞行为的变化。如果随时间发现这种变化,融化一管新鲜的细胞可能会恢复原先的转染活性。比如,新鲜融化的NIH3T3细胞比传代8次的细胞表现出更高的转染效率,融化细胞的进一步传代并没有降低转染效率。因此,如果观察到转染效率降低,可以试着转染新鲜培养的细胞以恢复较佳结果。
细胞转染效率低下的几个大坑:1.准备不足做脂质体转染的时候,在开展正式实验前要多做预试验,优化转染条件。优化转染条件包括:脂质体的用量、DNA密度、细胞密度、脂质体和DNA混合孵育时间等等。2.电压过大做电转的时候,如果电压太大,往往会发生细胞大量死亡的情况。不同的细胞,需要的电压是不一样的。这就要求我们多做预实验,多摸索条件。对于大多数细胞来说,其较佳电压位于250-1250v/cm。另外,就是进行转染的细胞应该处于对数生长期。处于对数生长期的细胞的抗损伤能力是较强的。细胞浓度应该处于5x106到1x107/mL之间。每次转染的质粒应该控制在4-6μg,如果﹥10μg,转染效率也较大降低。电击后,应该将DNA和细胞混合液在室温下放置10分钟,使细胞恢复损伤。转染试剂的准备①将400ul去核酸酶水加入管中,震荡10秒钟,溶解脂状物。
转染方式:细胞由带负电荷的磷脂双分子层构成,这对大分子物质来说是个不可透过的屏障,比如DNA和RNA的磷酸骨架,其也带负电荷。为了使核酸穿过细胞膜,研究人员开发了多种技术,大致分为三类:化学方法---利用载体分子包被核酸使其呈现中性电荷或正电荷。生物方法---利用基因工程细菌转染非细菌基因到细胞中。物理方法---在细胞膜表面产生一个瞬时的孔从而导入DNA。然而,没有一种方法适用于所有的细胞和实验,理想的方法应根据您的细胞类型和实验需要进行选择,理想的方法应具有高转染效率,低细胞毒性和对正常生理学的影响较小,并且易于使用和可重复性等特点。必须通过对药物的抗性筛选进行扩增或通过表型变化进行鉴定。南京贵阳细胞高效转染试剂
对于原代细胞,可用促有丝分裂刺激物进行细胞活化。济南正规细胞高效转染试剂厂家现货
细胞转染之PEI转染法:1.细胞分盘:通过胰酶消化收集细胞,用适当的完全培养基以1×105至4×105细胞/cm2的密度平铺细胞于35mm培养皿上(根据实验需要选择培养皿,使细胞贴壁后所占面积达到培养皿总面积的70-90%)。将细胞置于含5%CO2的37℃温箱中孵育8-24h,当细胞贴壁完全后即可开始转染。转染前2h换液(用1.5ml无血清培养基置换旧的培养基)。注:PEI转染法对细胞生长有克制作用,在换液前细胞几乎不生长,所以需要密度比较大时做转染。2.制备PEI-DNA混合物以35mm组织培养皿用240μl反应总体积为例。先在无菌EP管中加入120μl1×HBS,再加入质粒DNA(总量1-3μg为佳),混匀后加入等体积PEI工作液,充分混匀后室温静置20-30min,较后将这240μl的PEI-DNA混合液逐滴加入上述单层细胞的细胞培养基中,轻轻摇动平皿混匀后置于含5%CO2的37℃温箱孵育。济南正规细胞高效转染试剂厂家现货
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细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般...