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稳定转染细胞系的筛选：生长的细胞比不分裂的细胞更快的受到GENETICIN物品的影响。转染后，在开始筛选前等待48-72小时，使细胞表达足够量的抗性酶，保证在开始筛选时可以自我保护。转染后48-72小时倒掉培养基，加入含有GENETICIN物品的培养基，物品的浓度根据剂量反应曲线确定，足够杀死未转染细胞。因为许多因子影响到筛选所需的GENETICIN物品的较佳浓度，包括细胞类型，培养基和血清浓度等，所以有必要对每种细胞作一个剂量反应曲线，确定较佳浓度。筛选较多可能需要一周时间，因为在致死剂量的GENETICIN物品存在条件下，细胞会分裂1-2次。在次培养细胞时使用较低剂量的物品，一般是筛选剂量的一半。筛选后的细胞一般是离散的克隆，根据实验目的不同，可以分别纯化（克隆），收集进行大量培养或染色并进行抗性克隆的计数。瞬时表达分析所需的人力和时间比稳定表达少。深圳正规细胞高效转染试剂厂家推荐

细胞转染：(1)转染试剂的准备A.将400ul去核酸酶水加入管中，震荡10秒钟，溶解脂状物。B.震荡后将试剂放在-20摄氏度保存，使用前还需震荡，。(2)选择合适的混合比例(1：1-1：2/脂质体体积：DNA质量)来转染细胞。在一个转染管中加入合适体积的无血清培养基。加入合适质量的MyoD或者EGFP的DNA，震荡后在加入合适体积的转染试剂，再次震荡。(3)将混合液在室温放置10—15分钟。(4)吸去培养板中的培养基，用PBS或者无血清培养基清洗一次。(5)加入混合液，将细胞放回培养箱中培养一个小时。(6)到时后，根据细胞种类决定是否移除混合液，之后加入完全培养基继续培养24-48小时。上海细胞高效转染试剂厂家脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中。

如何高效率实现细胞转染：阳离子脂质体转染试剂脂质转染试剂，以其适用宿主范围广，操作简便，对细胞毒性小，转染效率高受到研究者们的青睐。脂质体（liposome）是一种人工膜，在水相中形成具有双分子层结构的球形封闭囊泡。脂质体可以和带负电荷的核酸结合后重新形成复合物，当复合物接近细胞膜时，通过内吞作用形成内体（endosomes）进入细胞，通过缓冲液的作用以及脂质与内体膜融合，增大内体的内部渗透压，使内体结构破坏，释放出核酸。随后DNA复合物被释放进入细胞核内。对于普通细胞系，一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。利用脂质体转染法较重要的就是防止其毒性，因此脂质体与质粒的比例，细胞密度以及转染的时间长短和培养基中血清的含量都是影响转染效率的重要因素，通过实验优化合适的转染条件对于转染效率的提高很重要。

细胞转染实验的方法有哪些：1.脂质体法。中性脂质体是利用脂质膜包裹DNA，借助脂质膜将DNA导入细胞膜内。带正电的阳离子脂质体则不同，DNA并没有预先包埋在脂质体中，而是带负电的DNA自动结合到带正电的脂质体上，形成DNA-阳离子脂质体复合物，从而吸附到带负电的细胞膜表面，经过内吞被导入细胞。脂质体法始于1987年，此法的出现使得转染效率、转染的稳定性和可重复性较大提高。阳离子脂质体细胞毒性相对较高，对不同的细胞可能会干扰细胞的代谢。2.非脂质体转染。较新的纳米聚合物转染试剂，如Entranster试剂，纳米材料，细胞毒性小，转染效率高，渐渐成为各大实验室的选择转染试剂。总染色体重组或基因调控变化等而演化。

细胞转染实验简介：实验原理外源基因进入细胞主要有四种方法：电击法、磷酸钙法和脂质体介导法和细菌介导法。电击法是在细胞上短时间暂时性的穿孔让外源质粒进入;磷酸钙法和脂质体法是利用不同的载体物质携带质粒通过直接穿膜或者膜融合的方法使得外源基因进入细胞;细菌法是利用包装了外源基因的细菌传染细胞的方法使得其进入细胞。但是由于电击法和磷酸钙法的实验条件控制较严、难度较大;细菌法的前期准备较复杂、而且可能对于细胞有较大影响;所以现在对于很多普通细胞系，一般的瞬时转染方法多采用脂质体法。必须通过对药物的抗性筛选进行扩增或通过表型变化进行鉴定。郑州正规细胞高效转染试剂销售厂家

瞬时和稳定表达DNA转染后，转入基因的表达可以在1－4天内检测到。深圳正规细胞高效转染试剂厂家推荐

细胞转染为什么不能加血清：不同的细胞及转染试剂要求转染的条件是不同的。较好是在靠前次实验前做一个预实验，比如：HeLa，293，CHO，COS7，MCF－7，HepG2等细胞，是否加血清，对不同的细胞是有不同的影响的，有些细胞是可以有血清的，有些加血清就会受影响。转染后在6小时左右较好换液且换为有血清的培养基，其一因为普通转染试剂对细胞的毒性作用大，其二可降低因血清的缺乏引起的细胞的死亡。转染时不加血清是防止血清的干扰作用，转染后可适时加入。加入过早会引起未转染细胞的优势生长，过晚会引起较多细胞死亡。可实时观察1/5细胞变圆的时候加入血清。深圳正规细胞高效转染试剂厂家推荐