细胞转染效率低下的几个大坑:1.试剂过期有时候转染效率低下,还要考虑会不会存在试剂过期的情况。毛博当年做转染整整半年,百思不得其解。较后发现,原来是Lipofectamine2000过期了。换了之后,立马成功。根据我的经验,尽量使用开封半年内的,因为过了半年后,就算没有过失效期,但是细胞毒性较大增加,而转染效率却较大下降。千万不要为了省钱,影响实验进度哈。2.未加血清转染后未及时加入血清,会导致细胞大量死亡。一般要在转染后的4-6小时换液且换为有血清的培养基。根据毛博的经验,其实也可以在原来的无血清培养基里面滴加血清。这个时候,较好不要换液,不要打扰细胞,让它安安静静地休息。但是也不能过早加入血清。过早的话,会引起未转染的细胞疯狂生长。那么,什么是较佳时机呢?在20%的细胞变圆的时候,就是加血清的较佳时机。转染技术转染是将外源遗传物质导入真核细胞的过程,是细胞和分子生物学研究的重要工具。金华细胞高效转染试剂价格
细胞转染,你至少要掌握以下几点:主要有下面几种方法::化学法:磷酸钙法、DEAE-右旋糖苷法、阳离子脂质体法;物理法:电穿孔法、显微注射法、颗粒传递法;细菌介导法:逆转录细菌、腺细菌A.阳离子脂质体法:带正电的脂质体与核酸带负电的磷酸基团形成复合物被细胞内吞。特点:简单通用,适用性广,转染效率高,重复性好,但转染时需除血清,转染效率随细胞类型变化大。由于脂质体复合物与贴壁细胞的接触机会远大于悬浮细胞,所以贴壁比悬浮转染效率要高。悬浮细胞建议使用电穿孔法。B.电穿孔法:利用高压电脉冲对细胞膜的干扰,使其形成利于核酸进入的微孔长沙细胞高效转染试剂供应商在现生命可续研究中,大部分的工作是利用基因功能研究来探索生命过程。
转染的注意事项:细胞铺板密度用于转染的较佳细胞密度根据不同的细胞类型或应用而异。一般转染时,贴壁细胞密度为70%-90%,悬浮细胞密度为2×106-4×106细胞/ml时效果较好。确保转染时细胞没有长满或处于静止期。因为转染效率对细胞密度很敏感,所以在不同实验间保持一个基本的传代步骤很重要。铺板细胞数目的增加可以增加转染活性和细胞产量。在三种不同密度进行细胞铺板的比较表明铺板密度较高的,CAT活性也较高。得到较高活性所需的LIPOFECTAMINE试剂的量也相应增加了。这些结果说明,对于转染相同量的DNA所需的较佳阳离子脂质体试剂的量会因细胞密度而异
细胞转染为什么不能加血清:不同的细胞及转染试剂要求转染的条件是不同的。较好是在靠前次实验前做一个预实验,比如:HeLa,293,CHO,COS7,MCF-7,HepG2等细胞,是否加血清,对不同的细胞是有不同的影响的,有些细胞是可以有血清的,有些加血清就会受影响。转染后在6小时左右较好换液且换为有血清的培养基,其一因为普通转染试剂对细胞的毒性作用大,其二可降低因血清的缺乏引起的细胞的死亡。转染时不加血清是防止血清的干扰作用,转染后可适时加入。加入过早会引起未转染细胞的优势生长,过晚会引起较多细胞死亡。可实时观察1/5细胞变圆的时候加入血清。再通过融合或细胞内吞进入细胞。
影响转染试验的因素:1.转染试剂跟细胞系不匹配转染试剂跟细胞系也是讲究配合默契的,使用同一种试剂,不同细胞系转染效率通常不同。但细胞系的选择通常是根据实验的需要,因此在转染实验前应根据实验要求和细胞特性选择适合的转染试剂。每种转染试剂都会提供一些已经成功转染的细胞株列表和文献,通过这些资料可选择较适合实验设计的转染试剂。当然,较适合的是高效、低毒、方便、廉价的转染试剂。因为有些细胞系是不稳定的,可能随着培养时间的改变,培养条件的不同,不同的选择压力,可能引起不同的克隆选择。因此就算是同一个细胞系,在不同条件下转染能力的差异可能会很大。震荡后将试剂放在-20摄氏度保存,使用前还需震荡。温州细胞高效转染试剂厂家
较适合转染的细胞是经过几次传代后达到对数生长期的细胞。金华细胞高效转染试剂价格
细胞转染操作方法:转染,是将外源性基因导入细胞内的一种专门技术。随着基因与蛋白功能研究的深入,转染目前已成为实验室工作中经常涉及的基本方法。转染大致可分为物理介导、化学介导和生物介导三类途径。电穿孔法、显微注射和基因属于通过物理方法将基因导入细胞的范例;化学介导方法很多,如经典的磷酸钙共沉淀法、脂质体转染方法、和多种阳离子物质介导的技术;生物介导方法,有较为原始的原生质体转染,和现在比较多见的各种细菌介导的转染技术。理想细胞转染方法,应该具有转染效率高、细胞毒性小等优点。细菌介导的转染技术,是目前转染效率较高的方法,同时具有细胞毒性很低的优势。但是,细菌转染方法的准备程序复杂,常常对细胞类型有很强的选择性,在一般实验室中很难普及。其它物理和化学介导的转染方法,则各有其特点。金华细胞高效转染试剂价格
细胞转染方法:1.脂质体转染法阳离子脂质体表面带正电荷,能与核酸的磷酸根通过静电作用,将DNA分子包裹入内,形成DNA脂复合物,也能被表面带负电的细胞膜吸附,再通过融合或细胞内吞进入细胞。脂质体转染适用于把DNA转染入悬浮或贴壁培养细胞中,是目前实验室较方便的转染方法之一,其转染率较高,优于磷酸钙法。由于脂质体对细胞有一定的毒性,所以转染时间一般不超过24小时。常用细胞类型:cos-7、BHK、NIH3T3、Hela等2.电穿孔转染法电流能够可逆地击穿细胞膜形成瞬时的水通路或膜上小孔促使DNA分子进入胞内,这种方法就是电穿孔。当遇到某些脂质体转染效率很低或几乎无法转入时建议用电穿孔法转染。一般...