PCR出现假阳性的原因分析。引物设计不合适:选择的扩增序列与非目的扩增序列有同源性,因而在进行PCR扩增时,扩增出的PCR产物为非目的性的序列。靶序列太短或引物太短,容易出现假阳性。需重新设计引物。靶序列或扩增产物的交叉污染:这种污染有两种原因:一是整个基因组或大片段的交叉污染,导致假阳性。这种假阳性可用以下方法解决:①操作时应小心轻柔,防止将靶序列吸入加样器内或溅出离心管外。②除了酶及其他不耐高温的物质外,所有试剂或器材均应高压消毒。所用离心管均应一次性使用。③必要时,在加标本前,反应管和试剂用紫外线照射,以破坏存在的核酸。二是空气中的小片段核酸污染,这些小片段比靶序列短,但有一定的同源性。可互相拼接,与引物互补后,可扩增出PCR产物,而导致假阳性的产生,可用巢式PCR方法来减轻或消除。简述荧光定量pcr的基本原理。贵州有哪些pcr原理
PCR实验技术中的锚定PCR(AnchoredPCR)介绍:锚定PCR主要用于分析具有可变末端的DNA序列,Loh等用A-PCR对人外周血淋巴细胞T细胞受体α-链的mRNA的多变性进行了分析。先合成cDNA,并用末端脱氧核苷酸转移酶在其3’-可变区末端加上一个PolyG尾巴。Loh等恒定区与可变区连接部位设一个引物,另一个引物是一个具5’-polyG尾巴的引物。带有PolyG尾巴的引物是一个固定点,它可以并与PolyG尾巴结合,无论其余部分序列如何,只识别片段末端,利用此法可从前述mRNA中检出至少20种不同序列,每一种都是独特的,表明A-PCR不对任何特殊序列有倾向性结果,可用于T细胞及其它部位抗体基因的研究。湖南荧光定量pcr要多久荧光定量pcr正常值多少?
PCR实验技术中的快速PCR(FastPCR)介绍:在快速PCR中,通过缩减PCR步骤所需的时间来完成更快的扩增,而不影响扩增产量和效率。快速循环条件尤其适用于均有高扩增能力的DNA聚合酶,这种聚合酶在每次结合中可引入更多的核苷酸。高扩增能力的聚合酶可保持高扩增效率,而PCR延伸时间是Taq聚合酶(低扩增能力)延伸时间的1/2到1/3(图4)。通过将引物退火和延伸(如果温度只相差几度)合并成一步,PCR反应时间可进一步缩短。这个方案也被称为两步PCR方案。
PCR实验过程一般分为三步:DNA变性:(90℃-96℃):双链DNA模板在热作用下,氢键断裂,形成单链DNA退火:(60℃-65℃):系统温度降低,引物与DNA模板结合,形成局部双链。延伸:(70℃-75℃):在Taq酶(在72℃左右,活性比较好)的作用下,以dNTP为原料,从引物的3′端开始以从5′→3′端的方向延伸,合成与模板互补的DNA链。每一循环经过变性、退火和延伸,DNA含量即增加一倍。如图所示:现在有些PCR因为扩增区很短,即使Taq酶活性不是比较好也能在很短的时间内复制完成,因此可以改为两步法,即退火和延伸同时在60℃-65℃间进行,以减少一次升降温过程,提高了反应速度pcr检测就找英瀚斯生物!
PCR实验技术中的不对称PCR(AsymmetricPCR)介绍:不对称PCR的基本原理是采用不等量的引物产生大量的单链DNA(ss-DNA)。这两种引物分别称为限制性引物与非限制性引物;其比较好比例一般为1:50~1:100,关键是限制引物的量。限制性引物太多太少,均不利于ss-DNA.不对称PCR反应过程:一般来说,在不对称PCR反应中,在开始的20-25个循环中,两个比率不对称的扩增引物产生出双链DNA,当限量的那个引物耗光后,随后的5-10个循环就产生出ssDNA.产生的ds-DNA与ss-DNA由于分子量不同,可以通过电泳分离。pcr检测实验有哪些分类?山西推荐pcr价格
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pcr防止污染的方法(一)合理分隔实验室:将样品的处理、配制PCR反应液、PCR循环扩增及PCR产物的鉴定等步骤分区或分室进行。(二)吸样器:吸样器污染是一个值得注意的问题。由于操作时不慎将样品或模板核酸吸入器内或粘上器头是一个严重的污染源,因而加样或吸取模板核酸时要十分小心。(三)预混和分装PCR试剂:所有的PCR试剂都应小量分装,如有可能,PCR反应液应预先配制好,然后小量分装,-20℃保存。以减少重复加样次数,避免污染机会。另外,PCR试剂,PCR反应液应与样品及PCR产物分开保存,不应放于同一冰盒或同一冰箱。(四)防止操作人员污染,使用一次性手套、吸头、小离心管应一次性使用。(五)设立适当的阳性对照和阴性对照,阳性对照以能出现扩增条带的比较低量的标准病原体核酸为宜,并注意交叉污染的可能性,每次反应都应有一管不加模板的试剂对照及相应不含有被扩增核酸的样品作阴性对照。(六)减少PCR循环次数,只要PCR产物达到检测水平就适可而止。(七)选择质量好的Eppendorf管,以避免样本外溢及外来核酸的进入,打开离心管前应先离心,将管壁及管盖上的液体甩至管底部。贵州有哪些pcr原理
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