实验动物模型的灌注取材方法:
小鼠灌注灌流
固定小鼠时我一般采用输液器的针头(4号半,这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白,针头要从心轴方向进针,刺入心尖3~4毫米左右就可以了,开始灌流后剪破右心耳,约40毫升生理盐水,后再灌流约20毫升多聚甲醛,整个灌流固定的过程就完成了。
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大鼠灌注
按大鼠体重,用2%戊巴,比妥钠(0.25ml/100g)进行腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,向左心室内注射1%肝素钠0.2ml后经左心室行主动脉插管,血管钳固定后剪开右心耳,先以生理盐水150ml快速冲洗血管,然后用4%多聚甲醛的0.01mol/LPBS(4℃,PH7.40)250ml灌注固定,先快后慢,共需时间为50min,之后取材,置4%多聚甲醛固定液后固定,在4℃冰箱内保存。多聚甲醛进入大鼠体内,大鼠会出现四肢、尾的抽搐,**终以肝脏发白、内脏鼓起即灌注好。 实验动物模型,常见问题汇总。安徽专业实验动物模型多少钱
承接过的部分动物模型:消化系统胃溃疡模型大鼠胃炎模型新生鼠坏死性结肠炎模型慢性脂肪肝模型肝纤维化模型急性肝损伤模型肝硬化模型大鼠急性肝损伤模型肝切除模型肝缺血再灌注模型肝纤维化模型肝部分切除模型;呼吸系统OVA***模型慢性肺阻塞模型慢性阻塞性肺模型肺纤维化模型急性肺炎模型窘迫呼吸症模型泌尿生殖系统肾纤维化模型嘌呤霉素诱导的肾病模型急性肾衰竭模型尿毒症模型单侧肾切除模型大鼠子宫内膜异位症模型卵巢早衰模型肾小管坏死小鼠模型心血管系统小鼠***模型动脉钙化模型脑卒中模型(脑缺血再灌注模型)心肌缺血模型蛛网膜下腔出血模型脑出血模型肺动脉高压模型股动脉血管炎模型失血性贫血动物模型心肌梗死模型神经系统抑郁模型帕金森模型尼古丁戒断模型睡眠剥夺模型大鼠癫痫模型阿尔兹海莫(AD)症模型大(小)鼠水迷宫实验内分泌系统糖尿病模型(Ⅰ、Ⅱ糖尿病)卵巢早衰模型、多囊卵巢模型大鼠甲状腺功能亢进症免疫疾病小鼠关节炎模型(CIA)桥本甲状腺炎模型(HT)多样硬化模型(EAE)裸鼠成瘤模型裸鼠皮下成瘤模型肾原位*模型肝原位*模型胃原位*模型肠原位*模型膀胱原位*模型肺原位*模型其他模型骨质疏松模型股骨头坏死模型骨性关节炎模型 内蒙古大鼠实验动物模型构建常规实验动物模型制作。
诱发性动物模型物理因素诱发的动物模型(physicalanimalmodels):是指用常见的物理方法如机械损伤、放射线、气压、手术等复制的动物模型。例如外科手术复制的大鼠急性肝衰和肺水肿动物模型,放射线复制的放射病等。化学因素诱发的动物模型(chemicalanimalmodels)是指用化学的方法复制的动物模型,如化学致cancer、化学中毒、强酸碱烧伤、某种有机成分的增或减导致营养性疾病等复制的动物模型。微生物因素诱发的动物模型(microorganismanimalmodels):是指用常见的生物方法,如细菌、病毒、寄生虫等复制的模型。例如柯萨奇B病毒复制大、小鼠、猪等心肌炎模型;志贺杆菌复制猴的细菌。复合因素诱发的动物模型(complexanimalmodels):是指两种以上的方法复制的模型。例如,大鼠或豚鼠的慢支:细菌+寒冷烟+寒冷细菌+SO2;大鼠肝硬化:CCl4、胆固醇、乙醇等因素来复制;大鼠cancer:二甲基偶氮苯胺+γ-射线。生物技术制作的动物模型(biotechnicalanimalmodels):是指利用动物卵或胚胎移植、胚胎嵌合、细胞核移植、转基因、基因敲除、RNAi干扰和克隆等生物技术复制的模型。
创建传染病实验动物模型系统,为医学发展做贡献。据WHO不完全统计,每年因传染病直接死亡的有300余万人,是威胁社会安定的重大因素。动物模型是病原确定与溯源、传染与致病研究、疫苗与药物评价等的必需条件。该领域一直存在两大国际难题:一是动物对人类病原易感性差、特异诊断难、模型模拟不全方面的等技术难题,二是模型需满足不同研究需求、资源需长期创制和积累等建设难题。南京英瀚斯生物科技有限公司做实验外包服务,一站式医学科研平台,欢迎来电咨询!实验动物模型制作周期多久?
蛛网膜下腔出血系由脑底或脑表部位的血管破裂,血液破入蛛网膜下腔引起。颅内动脉瘤,脑动、静脉畸形,血压高动脉硬化等为常见病因。蛛网膜下腔出血后可引起脑血管痉挛。因此,蛛网膜下腔出血和迟发性脑血管痉挛的模型有许多共同之处,造模时可同时作为参考。
英瀚斯熟练掌握蛛网膜下腔出血造模,及其他动物模型。
复制方法 :健康大鼠,雌雄不拘,体重为250~350g。将钓鱼线剪成长约50mm,并在18mm处作标记,酒精消毒后置于无菌生理盐水中备用。麻醉后仰卧固定,剃除颈部毛发,手术区域皮肤消毒。颈正中切口,分离右侧颈总动脉、颈外动脉、颈内动脉,结扎、切断颈外动脉分支及颈总动脉分叉处小动脉,并游离颈外动脉主干,沿着颈内动脉暴露翼腭动脉,在颈外动脉残端放一丝线,使其呈一松结。在翼腭动脉起始部置一微动脉夹,同时夹闭颈总动脉及颈内动脉主干近端。在颈外动脉残端剪一小口,将制备好的栓线插入。此时将颈外动脉残端处丝线的松结拉紧,除去颈内动脉的动脉夹,继续将丝线沿着颈内动脉插入,直至感到有阻力,这时稍用力再插入1.0~1.5mm后有落空感即可抽出丝线并除去微动脉夹。栓线的直径及插入的深度根据动物的体重而定。 实验动物模型有哪些注意事项?湖南好的实验动物模型怎么选择
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裸鼠瘤模型是比较常见和常用的一种瘤动物模型,它在皮下移植瘤瘤模型的建立中起到重要作用。裸鼠瘤模型的接种一般有细胞接种和瘤块接种两种方式。裸鼠移植瘤模型的建立具有建立周期短、成瘤率高、易于操作、成本低的优点。
造模方法:
1、细胞是贴壁细胞,细胞培养在RPMI-1640培养基中细胞传代培养:当细胞长至80-90%时,去除培养基,加入PBS洗1-2次,去除PBS后,加入1ml胰酶消化1-3min后,加入3ml完全培养基中和胰酶终止消化,将消化的细胞转移至15ml离心管中,1000rpm离心5min。倒掉上清后,加入3ml培养基重悬细胞,1:3传代至培养皿中培养。
2、将长到培养皿80%-90%的细胞用胰酶消化下来,1000rpm离心,去除上清,加入完全培养基重悬细胞,将细胞分别种在6孔板中,每孔种1×105个细胞。
3、将细胞进行扩增培养,对细胞进行计数,将数量调整为2×107个细胞/ml。5、8周龄15只裸鼠适应性饲养7天后,随机分为3组,每组分别在右腋皮下接种2×106(100ul/只)细胞。接种约两周后出现结节,每周瘤大小两次。将裸鼠放入鼠笼中正常饲养4周后处死裸鼠,取裸鼠瘤拍照冻存。 安徽专业实验动物模型多少钱
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