脂质体质量控制的重要性与常规药物剂型(如⼩分⼦注射溶液)不同，脂质体中装载的***性分⼦在全⾝给药后(如静脉注射)转运到肿瘤细胞的过程更为复杂主要经历以下⼏个步骤:(1)从⾎管内间隙外渗到组织间质:脂质体通过扩散和/或对流穿越**⾎管壁不连续的内⽪连接点(100nm-2µm)进⼊**间质。同时⼀部分脂质体被MPS从体循环中***，特别是对于⼤尺⼨(>200nm、疏⽔和带电颗粒表⾯(带负电荷或正电荷)的颗粒。(2)通过扩散和对流进⾏间质运输，以接近单个肿瘤细胞。利⽤主动靶向对脂质体进⾏表⾯修饰将克服颗粒在细胞外基质(ECM)中扩散的物理阻⼒，因为颗粒上的靶向配体与肿瘤细胞表⾯的受体之间产⽣了更⾼的亲和⼒(3)通过⾮特异性或特异性结合的⽅式附着于细胞膜(4)通过内吞作⽤、膜融合或扩散进⼊细胞。内吞作⽤的途径取决于颗粒⼤⼩即⼤⼩为200nm，500nm的颗粒为⽹格蛋⽩介导的内吞作⽤和⼩泡介导的内吞作⽤，⼤胞吞作⽤可达5µm。(5)细胞内转运和药物释放。基于脂质体的这种运输过程由于循环脂质体颗粒⽆法穿过⼼脏⾎管的连续内⽪连接，与传统的阿霉素给药相⽐，Doxil明显降低了⼼脏毒性。与常规药物相⽐DaunoXome可使多柔⽐星的**递送量增加约10倍，并在体内提供持续释放。脂质体制备方法：薄膜⽔化法。上海脂质体载药DNA
脂质体配方中脂类的毒性由于LNPs主要由天然脂质组成，它们被认为是无药理活性和毒性**小的。然而，在某些情况下，LNP并非免疫惰性，而LNP成分是可能对人体细胞有毒的非天然化合物。例如，虽然阳离子脂质作为递送脆弱化合物(如核酸)的载体提供了巨大的希望，但一些阳离子脂质会引起细胞毒性。在某些情况下，阳离子脂质会减少细胞中的有丝分裂，在细胞的细胞质中形成液泡，并对关键的细胞蛋白如蛋白激酶c造成有害影响阳离子脂质的细胞毒性取决于它们的结构亲水头基团;具有季铵头基的两亲化合物比具有叔胺头基的两亲化合物毒性更大。疏水链对脂质毒性的影响还没有得到很好的研究，阻碍了低毒性脂质的设计。脂质分子的疏水部分强烈调节其相行为及其对LNP的有用性，但某些脂质相的存在也与膜损伤和细胞毒性有关。PEG-脂质偶联物也可能引起意想不到的毒性，而已知含有PEG-脂质偶联物的LNPs与免疫细胞相互作用，产生针对某些聚乙二醇化脂质的不想要的抗体。云南脂质体载药研究Zeta电位被认为是影响细胞摄取和药物传递的重要因素之一。
脂质体疫苗通常在已知疫苗中使用纯化抗原或减毒病原体作为免疫原。然而，长期的免疫反应可能不会由纯化抗原诱导，甚至有时根本不会诱导反应。另一方面，减毒疫苗可以在免疫的患者中产生应答。然而，递送包裹在脂质体内的抗原可诱导长期应答，这在某些抗原的直接免疫中没有观察到。研究表明，恶性细胞的细胞膜可以形成包封潜在抗原的脂质体。文献报道了包封在脂质体中的肽作为**疫苗的***应用能力。有研究评估了BLP25(一个含有合成人MUC1肽的25个氨基酸序列)作为**疫苗的能力。用二硬脂酰磷脂酰胆碱、胆固醇和二肉豆醇酰磷脂酰甘油(摩尔比3:1:25)中含有的单磷脂酰脂A(1%w/w)制备脂质体，然后与脂偶联和非偶联的MUC1肽结合。C57BL/6小鼠免疫分别采用肽相关脂质体、肽与无肽脂质体混合、脂肽单独免疫。结果表明，脂质体制剂对免疫应答有深远的影响。与物理相关的脂质体观察到强烈的免疫反应(抗原特异性t细胞细胞反应)，而与肽混合的无肽脂质体或单独的脂肽则没有。体液免疫反应受到关联性质的***影响，这可以通过表面暴露的肽脂质体诱导muc1特异性抗体来证明。因此可以通过调整脂质体药物传递系统来诱导优先细胞反应这提出了一个假设即不同的脂质体配方刺激不同的免疫途径。
基因递送用脂质体随着科学技术的进步，与人类基因组及其在疾病***中的应用相关的各种发现变得更加触手可及。尽管有了这些发展，选择一个合适的载体将基因传递到目标是至关重要的。其中一种重要的载体是脂质体，它可以将DNA、反义寡核苷酸、siRNA和其他潜在的药物输送到细胞核中。专门设计的脂质体如阳离子脂质体、pH敏感脂质体、融合性脂质体和基因体被用于基因递送研究。由于DNA带有强烈的负电荷，因此转染细胞变得非常困难。DNA进入细胞核可以用不同的方法进行。它们大致可分为物理、化学、生物和机械。使用脂质体传递DNA属于化学范畴。阳离子脂质体作为DNA转染载体已显示出良好的效果。然而，可以观察到，转染效果比较好的脂质有三个主要成分:带正电荷的头基团与带负电荷的DNA相互作用，决定脂质溶解度的连接基团和有助于将脂质锚定在双分子层上的疏水性基团。脂质DNA络合是由于脂质表面的阳离子电荷使DNA静电吸附而形成的。内容物的递送可能归因于阳离子脂质体的膜融合，同时避免了核仁和溶酶体对DNA的降解。脂质体的大小是res***的重要决定因素。在这方面，当脂质体用于基因递送时，内皮细胞的通过是***道屏障。基因转移**重要的靶***是肝脏。脂质体质量控制主要包括原材料质量控制、制备工艺参数控制产品特性测试、微生物污染控制和质量标准建立等。
脂质体靶向递送中叶酸配体修饰脂质与生物活性小分子(如叶酸)的结合已被研究用于靶向递送核酸。例如，由叶酸与1-棕榈酰-2-油酰-sn-甘油-3-非共价结合而形成的脂质体乙基磷脂胆碱:胆固醇脂质体显著提高胸苷激酶质粒DNA转染效率，抑制体外TSA和SCC7细胞生长。这些叶酸相关的脂质体在移植SCC7**的小鼠中显示出较高的抗**效果。在另一种方法中，叶酸标记的阳离子脂质体与小牛胸腺DNA复合物***巨噬细胞，与不含叶酸的普通阳离子脂质体相比，显示出更高的DNA叶酸受体表达细胞的递送。在荷瘤小鼠中，与不含叶酸的脂质体相比，叶酸标记的脂质体诱导干扰素-g和白细胞介素-6的产生，延长了存活时间。甘草次酸已被用于靶向肝细胞肝*细胞，基于一项研究表明，与邻近的非**肝细胞相比，甘草次酸的结合靶点蛋白激酶C在肝细胞*细胞表面的表达更高。合成了甘次酸-次酸-聚乙二醇-聚胆甾醇缀合物,并将其与DOTAP和胆固醇配制成阳离子脂质体。这些脂质体与表达GFP的质粒DNA形成复合物的能力更高，并且与缺乏甘次酸的对照阳离子Lipo脂质体相比，能增强质粒DNA转染至肝*细胞的能力。含有DOTAP、胆固醇和DSPC-PEG2000的阳离子脂质体可以递送microRNA 。上海脂质体载药DNA
胆固醇衍生物阳离子脂质DMHAPC-Chol，并表明其可促进血管内皮生长因子(VEGF) 特异性sirna进入肿瘤细胞。上海脂质体载药DNA
脂质体制备方法：溶剂注射技术这种技术是将脂质物质和亲脂物质溶解在与⽔混溶的有机溶剂中，然后将有机相注⼊⼤量的⽔缓冲液中，从⽽⾃发形成⼩的单层脂质体。在其他改进的⽅法中，通过管状(例如Shirasu多孔玻璃膜或中空纤维结构)中的y型连接器和膜接触器注⼊/注⼊两流溶液装置，以改善有机相与⽔相的微混合。溶剂在⽔相介质中迅速扩散，界⾯湍流导致⼩⽽均匀的脂质体形成。根据制备条件的不同，可以制备80nm⾄300nm之间的粒径，并且不需要额外的能量输⼊来减⼩粒径，例如超声和挤压。应使⽤蒸发、冻⼲、透析或滤除有机溶剂，并将脂质体悬浮液浓缩⾄所需体积。⼄醇由于其安全性，通常被⽤作有机溶剂。各种制备参数，包括流速、溶剂和⽔溶液的温度、脂质浓度以及搅拌速率，都会影响颗粒的性质。Arikayce采⽤“⼄醇输注”或“在线输注”的⽅法制备阿⽶卡星脂质体。通过y型连接器和在线混合器将**少量的脂质⼄醇溶液和硫酸阿⽶卡星⽔溶液混合，形成纳⽶级的阿⽶卡星脂质体。上海脂质体载药DNA
