HE染色不管怎么操作,始终无法染色或淡染答:这种情况一般因为组织固定时采用了酸性甲醛;或者组织在甲醛中浸泡时间太长;或者久置的甲醛变性分解为甲酸。补救:防患于未然,要么使用新鲜的中性甲醛固定,要么在存放的甲醛中加一点碳酸钠中和甲酸。对于已经固定的组织可考虑再次固定;对于已经制出的片子,染色前采用5%重铬酸钾溶液浸泡半小时以上,然后自来水漂洗5min,可改善染色。也可以将切片放入3%硫酸铁铵溶液中,补充染色媒介,增强苏木素与组织的亲和力(苏木素染色必须要媒介才能染上,单纯的苏木素与组织的亲和力很弱)。HE染色是病理实验中比较用的一种基础染色方法。山西质量好的HE染色
HE染色:在组织病理学中,苏木素-伊红染色是一种日常使用比较普遍的常规染色方法。常规苏木素染色的对比染色是用伊红,也有采用焰红,因为焰红比伊红色泽更鲜明,还有采用橘黄G,比布里希猩红,波尔多红等作为对比染色。伊红是比较常用的胞质染料,本身溶于醇而不溶于水,为砖红色粉末状或酱红色结晶。配方:伊红Y(水溶)0.5-1g,蒸馏水99ml。如果取用伊红Y(醇溶性)应当溶于99ml 75%或95%的乙醇中。如果在伊红液中加入0.5ml冰醋酸,可以加速其染色过程,使得胞质的色泽更加艳丽。结果是细胞核呈蓝色,胞质、肌肉、结缔组织、红细胞和嗜伊红颗粒呈不同程度的红色。钙盐和各种微生物也可染成蓝色或紫蓝色。上海HE染色检测HE染色取材和样本保存方式。
HE染色伊红溶液中加入少量的冰醋酸(一般小于10%就行),可改变组织等电点,促进伊红与胞浆蛋白质结合,其本身不参与染色的反应。当苏木素染色效能极高,很短时间就导致核浆共染时,可适当地添加冰醋酸(一般不超过2%),抑制苏木素染色效能,方便控制染色时间,同时也能提高苏木素染色的清晰度。现在有商用的HE染色液卖,但是质量参差不齐。如果课题组较大,完全可以自己配制,效果也挺好。配制为乙酸浓度5%-7.5%和盐酸浓度为0.5%-1%的苏木素溶液放置一周,即可完全成熟,染色效果好,氧化膜和结晶都很少(一般苏木素中酸度越低越容易产生氧化膜和结晶,这也是提示更换苏木素的标志之一)。
HE染色主要是为通细胞及胞核形态、大小来区别各种细胞的,并不是直接通过颜色来区分的,HE染色细胞坏死的三种改变:(1)细胞核的改变:这是细胞坏死的主要形态标志,表现为核浓缩,核碎裂,核溶解。(2)细胞质的改变:由于胞质发生凝固或溶解,HE染色呈深红色颗粒状,如肝细胞坏死出现的嗜酸性小体医学|教育网搜集整理。(3)间质的改变:由于各种溶解酶的作用,基质崩解、胶原纤维肿胀、断裂或液化,与坏死的细胞融合成一片,呈红染的颗粒状无结构物质。南京英瀚斯生物HE染色规范化流程及注意事项?
HE染色常见问题:切片染色不均匀,有片状的弱着**存在答:(1)取材时组织太厚,固定过久,导致深部组织固定不佳,而表浅组织过度固定,而透明、脱水、浸蜡均是如此,这样在后期染色时就会出现染色不均匀。应该将厚的组织剖开固定。(2)制片过程有问题,切片厚薄不一,或者有刀痕,或组织与玻片间存在气泡。同一张切片厚薄不一,一般都是在制片时,刀片固定不佳或刀片钝或刀片与组织角度不佳(一般比较好角度为5°)(3)脱蜡前未烘烤,脱蜡时间过短或脱蜡液使用过久,导致脱蜡不彻底。(4)染色液过少,着色不均匀;或染色时部分组织干涸而另一部分湿润,这样会导致组织吸附染料的能力不一。(5)分化不当。南京英瀚斯,专业的病理染色实验服务平台。让您放心的实验外包公司,专业HE染色实验服务平台。山西质量好的HE染色
脑组织HE染色如何观察?山西质量好的HE染色
HE染色常见问题:成片的染色模糊不清,灰染答:(1)组织未及时固定,部分自溶;或固定不佳,深部组织未处理到。这种只能重新固定了。(2)尽管乙醇也是一种固定液,但尽量少用或不用,因为其会导致组织发硬变脆,染色效果不好。(3)包埋时蜡的温度过高,或切片后烤片时间和温度过久过高都不好,可能会导致无法染色。(4)脱蜡不彻底;染料有问题;分化过度导致的颜色变淡,镜下组织界限不清;染完后的脱水和透明不佳,水雾残留在组织上。(5)通风窗中(防止空气中的水雾),戴口罩操作封片(减少哈气带来的水雾)。山西质量好的HE染色