1.如何挑选实验动物模型公司?
答:可以的话实地看下,有自己的动物房可以的话,方便长期饲养。以及有配套的病理、分子检测平台更好,可以整体课题全包,省得动物运输麻烦。在英瀚斯生物做过,一站式的还不错。
答:看你做什么模型了,难度大的可能需要技术人员摸索条件,可以的话面谈参观实验室,甚至可以一起做个预实验。
答:看下动物房条件、卫生状况、空调。裸鼠的话需要IVC动物房。还有造模以及检测设备等。之前在南京英瀚斯做的,脑立体定位注射、水迷宫什么的设备都有。 英瀚斯生物,专业承接大鼠小鼠裸鼠兔实验动物模型。黑龙江实验动物模型哪家好
APP 转基因实验动物模型,神经细胞 β-淀粉样前体蛋白(APP)转基因动物模型是将人源性 APP 基因与小鼠基因组整合、表达和遗传。与正常动物相比,APP 转基因动物脑中Aβ表达过量,引起认知功能障碍等系列AD临床病理特征。
·PDAPP小鼠模型·转人类APP695swe和APP717V-F基因的PDAPP小鼠模型是由C57BL/6鼠与DBA/2F1鼠杂合而生。PDAPP小鼠APP表达水平高,6~9月龄时在模型小鼠大脑多区域表现出与AD相似的病理表现,如细胞外Aβ异常沉积、突触丢失、神经炎症反应和小胶质细胞增生等,但NFTs形成不明显。由于PDAPP小鼠在同月龄脑中Aβ沉积异常,主要用于与Aβ相关的AD疾病机制研究。
·Tg2576小鼠模型·Tg2576小鼠模型是转人类APP695基因小鼠,在9~12个月时表现出学习记忆功能减退,在大脑多部位逐渐出现Aβ沉积和形成老年斑,在皮层出现星形胶质细胞聚集,该模型一般应用于早期AD的研究。 黑龙江实验动物模型哪家好英瀚斯生物,实验动物模型,饲养、造模、取材、检测一站式完成。
二型糖尿病实验动物模型:胰岛素抵抗和胰岛β细胞的功能缺陷胰岛素分泌异常
诱导方法一:小剂量STZ加高脂饲料诱导糖尿病模型。高脂饲料喂养4周后,腹腔注射STZ(30mg/kg),1周后选空腹血糖大于11.1mmol/L。
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诱导方法二:转基因老鼠db/db小鼠:糖尿病小鼠(C57BL/KsJdb/dbmouse)也为Jackson实验室于1966年在C57BLKS/J(BKS)近交系中发现的自发性突变小鼠,该小鼠高糖、多尿及高尿糖水平的表型与人类的糖尿病患者非常相似。在10~14天出现高胰岛素血症,3~4周明显肥胖,在10周时可达野生小鼠的2~3倍,但身长比野生型短5%,并有高胆固醇血症和高甘油三酯血症。4~8周出现高糖血症,且表现出多食、消渴、多尿的典型糖尿病临床表现。
承接过的部分动物模型:消化系统胃溃疡模型大鼠胃炎模型新生鼠坏死性结肠炎模型慢性脂肪肝模型肝纤维化模型急性肝损伤模型肝硬化模型大鼠急性肝损伤模型肝切除模型肝缺血再灌注模型肝纤维化模型肝部分切除模型;呼吸系统OVA***模型慢性肺阻塞模型慢性阻塞性肺模型肺纤维化模型急性肺炎模型窘迫呼吸症模型泌尿生殖系统肾纤维化模型嘌呤霉素诱导的肾病模型急性肾衰竭模型尿毒症模型单侧肾切除模型大鼠子宫内膜异位症模型卵巢早衰模型肾小管坏死小鼠模型心血管系统小鼠***模型动脉钙化模型脑卒中模型(脑缺血再灌注模型)心肌缺血模型蛛网膜下腔出血模型脑出血模型肺动脉高压模型股动脉血管炎模型失血性贫血动物模型心肌梗死模型神经系统抑郁模型帕金森模型尼古丁戒断模型睡眠剥夺模型大鼠癫痫模型阿尔兹海莫(AD)症模型大(小)鼠水迷宫实验内分泌系统糖尿病模型(Ⅰ、Ⅱ糖尿病)卵巢早衰模型、多囊卵巢模型大鼠甲状腺功能亢进症免疫疾病小鼠关节炎模型(CIA)桥本甲状腺炎模型(HT)多样硬化模型(EAE)裸鼠成瘤模型裸鼠皮下成瘤模型肾原位*模型肝原位*模型胃原位*模型肠原位*模型膀胱原位*模型肺原位*模型其他模型骨质疏松模型股骨头坏死模型骨性关节炎模型 英瀚斯生物 专业承接各类实验动物模型!
肝切除实验动物模型造模方法:大小鼠的肝叶形状和大小不同。因此,切除每个肺叶需要特别注意其独特的形状和血管位置。左外侧叶很容易切除,因为它有一个狭窄的包含门静脉和肝静脉的蒂,并且不与下腔静脉旁肝相连。然而,如果切除***于切除左侧肝外叶(30%切除模型),则必须在肝左门区分离左侧正中门静脉和伴随的肝动脉。
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由于正中叶在腔静脉周围有一个较宽的半基部,切除该叶需要在距腔静脉3mm的距离处进行几次夹持。单纯结扎肝叶的宽基部切除术有很高的风险导致腔静脉收缩和残端肝组织损伤,因为大量结扎容易导致剩余肝组织变形。由于右上叶位于腔静脉上,基部非常宽,并向背侧延伸至右腔静脉旁肝组织,因此技术上**难切除。切除需要小心地将夹钳放置在离腔静脉3毫米的距离处,并使用4或5条穿刺缝线,以避免损伤残端和腔静脉旁肝组织(图6)。由于约70%的下腔静脉旁组织由右上门静脉的一个分支供应,这种潜在的损伤可能对小的残肝非常重要。 英瀚斯生物,可做实验动物模型验证药物效果实验。吉林提供实验动物模型哪家好
实验动物模型有哪些?黑龙江实验动物模型哪家好
实验动物模型的灌注取材方法:
小鼠灌注灌流
固定小鼠时我一般采用输液器的针头(4号半,这样肉眼可见就是肺部明显充气胀大变白,针头要从心轴方向进针,刺入心尖3~4毫米左右就可以了,开始灌流后剪破右心耳,约40毫升生理盐水,后再灌流约20毫升多聚甲醛,整个灌流固定的过程就完成了。
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大鼠灌注
按大鼠体重,用2%戊巴,比妥钠(0.25ml/100g)进行腹腔注射麻醉,开胸暴露心脏,向左心室内注射1%肝素钠0.2ml后经左心室行主动脉插管,血管钳固定后剪开右心耳,先以生理盐水150ml快速冲洗血管,然后用4%多聚甲醛的0.01mol/LPBS(4℃,PH7.40)250ml灌注固定,先快后慢,共需时间为50min,之后取材,置4%多聚甲醛固定液后固定,在4℃冰箱内保存。多聚甲醛进入大鼠体内,大鼠会出现四肢、尾的抽搐,**终以肝脏发白、内脏鼓起即灌注好。 黑龙江实验动物模型哪家好