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动物实验外包模型介绍:非酒精性脂肪肝病模型化学物质诱发模型小剂量链脲佐菌素结合高脂饮食,已被用于制备小鼠的NAFLD,可导致脂肪变性,炎症,纤维化甚至肝细胞*。四氯化碳(CCl4)可造成肝损伤,可单独施用或配合高脂饮食来诱发脂肪肝或肝纤维化。其机制主要是CCl4诱导肝脏发生氧化应激反应,导致有害的脂质和蛋白质过氧化产物不断产生和积累,并发生严重的坏死反应,从而导致肝细胞结构和功能破坏。这种方法造模时间较短,但是发病机制、病程变化及组织学形态与人类脂肪肝存在较大差异,并且药物毒性强,易致动物死亡。南京动物实验外包公司,裸鼠成瘤实验。福建医学动物实验外包实验室

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动物实验外包模型介绍:心肌肥厚(CH)大鼠模型建模方法:1.大鼠注射麻醉2.将大鼠右侧靠近右肾和胸骨的部位用剃毛器剃干净,酒精碘酒消毒3.在右侧肋骨下方用眼科剪竖直开2cm左右的切口,无创分离出右肾周围的组织脂肪4.用无菌棉球垫在右肾上方,显微镊分离出右肾内侧腹主动脉5.将6-0无菌丝线从分离的腹主动脉穿过,根据大鼠体重放上合适的垫针扎紧丝线,抽出垫针,造成约60%狭窄6.将多余的丝线剪断,移除棉球,注入0.5ml生理盐水,用5-0丝线将肌肉层和皮肤层缝合,涂上碘酒消毒7.术后青霉素20万U/只/天连续肌肉注射1周,预防感染。大鼠腹主动脉缩窄术后4周可达***心室肥厚模型,8周可达心衰模型。湖南模型动物实验外包价格动物模型 - 南京英瀚斯生物提供小鼠模型.**模型.动物实验外包。

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动物实验外包模型介绍:小鼠脑脊髓炎EAEEAE是实验动物通过神经组织(其中的某些成分)或病毒诱导产生的。EAE的诱导有主动诱导法和被动诱导法两种。不同的免疫方法,可影响抗原递呈,激发不同的免疫反应,这不但影响EAE的发生率,还可影响其发展与转归。通常采用主动诱导法制备EAE模型,将抗原与佐剂的混合乳剂直接注射至动物体内,经过一定时间的潜伏期,诱导EAE的产生。抗原注射部位的不同,可影响EAE的发生率、潜伏期、死亡率及复发率。常用的注射部位有脚垫、颈部及背部(皮下、皮内、肌肉)、腹腔和尾静脉等多种,其中以皮下多点注射及脚垫注射的发病率比较高,而颈部注射则有较高的复发率。因多次注射易引发免疫耐受,现在多采用单次注射抗原法。EAE的被动转移实验是研究其发病机制的比较直接证据,也是研究EAE的***及预防措施的良好模型。将抗原***的PLP特异性T细胞转输给同一品系的正常大鼠或小鼠,也可引起EAE。

动物实验外包模型介绍:复合因素致萎缩性胃炎动物模型【造模方法】1.大鼠以20mmol/L去氧胆酸钠每日灌胃6ml/kg,连续27周;40%酒精每周二、五空腹灌胃6ml/kg,连续12周,之后改为60%酒精,再连续15周;0.1%氨水放在避光的饮水瓶中,自由饮用,每天调换,连续27周。2.大鼠用0.2%去氧胆酸钠作饲料,每天以55℃热开水2ml/只进行灌胃刺激,并在造模的第1周及第5周每只皮下注射佐剂抗原免疫1次。造模期间动物常规喂养,连续造模90天。本法也可将0.2%去氧胆酸钠换为猪胆汁,将胆汁与50℃热水1:1比例12.5ml/kg灌胃。3.大鼠以60%酒精,每周空腹灌胃2次,每次8ml/kg;20mmol/L去氧胆酸钠灌胃,每日1次,每日8ml/kg;0.05%~0.1%氨水作为大鼠日常饮用水自由饮用,并记录每日饮用量;5mg/ml吲哚美辛灌胃,每日1次,每次8ml/kg,共24周。观察指标为:病理组织学改变,胃黏膜屏障功能指标,胃分泌功能指标等。动物实验外包服务介绍,动物造模以及评价。

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动物实验外包模型介绍:2型糖尿病动物模型高脂高糖饮食加STZ大鼠动物模型前面说了,STZ可以选择性破坏胰岛细胞,且破坏程度与STZ的用量有关。这种模型就是先给大鼠喂高脂高糖饲料,以诱发胰岛素抵抗,随后再腹腔注射小剂量的STZ不完全损伤胰岛β细胞,以诱发分泌障碍;比较终就造成了大鼠2型糖尿病。一直以来,使用高脂高糖饲料造模的各种动物模型,饲料的配方比较关键,大家也比较关注这个问题。可以买商用的饲料,但是有点贵。如果自己配制,可以参考以下配方,该配方来自《人类疾病动物模型的复制》第2版。“猪油10%,2.5%胆固醇,20%蔗糖,1%胆酸盐,66.5%普通饲料。”造模很简单。高脂高糖饲料喂4周;然后25mg/kg的剂量注射STZ(浓度为0.25%),接着继续高脂高糖饲料喂养4周。也可以将STZ剂量提高到30,每周1次,连续2周。都是可行的。验证模型的标准是血糖大于7.8以及胰岛素敏感指数下降。动物实验外包-实验外包检测。青海结果客观的动物实验外包报告

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动物实验外包模型介绍:阿尔茨海默病(AD)大鼠模型建模方法SD大鼠均采用1%戊巴比妥钠40μg/g腹腔内注射麻醉,麻醉后继而固定于脑立体定位仪上。按照大鼠脑立体定位图谱,以前囟为零起点,前囟后3.5mm处为穿刺点,中线右侧旁开2mm,而后牙科钻钻开颅骨,采用微量注射器自脑表面垂直进针3mm,即:(AP=-3.5mm,ML=2.0mm,DV=3.0mm),双侧海马CA1区缓慢匀速注射Aβ1-40各10μg(1μL),留针5min,退针后缝合伤口。造模后3d后,开始尾静脉注射,注射生理盐水,大鼠每只给药100μl/次/d,连续给药21d后,进行水迷宫行为学检测。福建医学动物实验外包实验室

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